Bazyluk W. 1956. Skorki - Dermaptera. Klucze do oznaczania owadów Polski, cz. XII, Warszawa, 16 ss.
Analityczne aspekty oznaczania platyny w próbkach klinicznych
description
Transcript of Analityczne aspekty oznaczania platyny w próbkach klinicznych
Analityczne aspekty oznaczania platyny w próbkach klinicznych
Uniwersytet Warszawski
Wydział Chemii
Magdalena Zawadzka
Spektrometria mas z jonizacją w plazmie indukcyjnie sprzężonej (ICP MS)
Praca wykonana w Pracowni Teoretycznych Podstaw Chemii
Analitycznej
Kierownik: prof. dr hab. Ewa Bulska
Opiekun: mgr Monika Kaczmarczyk
Celem pracy było ustalenie oraz porównanie parametrów analitycznych metod GF AAS i ICP MS do oznaczania platyny w próbkach klinicznych.
Mimo iż platyna należy do najrzadziej występujących pierwiastków w skorupie ziemskiej, to w ostatnich latach w literaturze ukazało się bardzo dużo prac poświęconych oznaczaniu tego metalu. Wynika to m.in. ze specyficznych fizycznych i chemicznych właściwości platyny. Przez dłuższy czas uważano, że
emitowana w formie metalicznej jest nieszkodliwa ze względu na swoją odporność chemiczną. Dzisiaj wiadomo, że związki platyny wykazują szerokie
spektrum efektów toksycznych na organizm ludzki. Tak więc kontakt ludzi nawet z niewielkimi ilościami platyny nie pozostaje bez wpływu na zdrowie.
Metoda ICP MS znalazła szerokie zastosowanie w analizie elementarnej pierwiastków występujących na poziomie śladowym. Charakteryzuje się niską granicą oznaczalności,
wysoką czułością, selektywnością oraz krótkim czasem pomiaru, a przede wszystkim jest metodą wielopierwiastkową.
• Optymalizacja metody
Pomiar standardowego roztworu wzorcowego (daily) w celu sprawdzenia intensywności sygnałów izotopów 24Mg, 115In, 238U oraz stosunku intensywności CeO+/Ce+ oraz Ba+
+/Ba+
• Interferencje
Izotopy jonów będących źródłem interferencji podczas oznaczania platyny
izotop
występowanie w
przyrodzie(%)
interferencjerównanie
korelacyjne
194Pt 32,9 HfO+, YbO
195Pt 33,8 HfO+
196Pt 25,3 HfO+, Hg, TaO, WO -0,005023*Hg 202
Izotop 195Pt został wybrany do dalszych badań
• Granice wykrywalności (GW) i oznaczalności (GO)
krzywa kalibracji dla Pt (1% HNO3)
y = 3266,2x + 249,57
0
50000
100000
150000
200000
250000
300000
350000
0 20 40 60 80 100 120
stężenie [ug/L]
inte
ns
yw
no
ść
[c
ps
]
krzywa kalibracji dla Pt (woda)
y = 3208,6x - 2904,4
-50000
0
50000
100000
150000
200000
250000
300000
350000
0 20 40 60 80 100 120
stężenie [ug/L]
inte
ns
yw
no
ść
[c
ps
]
Zależność kalibracyjna uzyskana dla roztworu kwasu ma większy kąt nachylenia co świadczy o lepszej czułości metody, poza tym ma bardziej prostoliniowy charakter.
woda kwasGW [µg/L] 0,075 0,030GO [µg/L] 0,097 0,042
• Wpływ Fe, Cu, Pd na oznaczanie platyny
Obecność powyższych metali w roztworach modelowych platyny nie
wpływa na jej sygnał.
• Badanie odzysku platyny w moczu i surowicy
Odzysk platyny w moczu i w surowicy zbadano stosując metodę dodatku wzorca. Roztwór moczu i surowicy rozcieńczono dziesięciokrotnie 1% HNO3.
Odzysk w moczu: 96,75 % ±1,19 %Odzysk w surowicy: 104,85 % ± 1,66 %
Absorpcyjna spektrometria atomowa z atomizacją w piecu grafitowym (GF AAS)
Metoda GF AAS również pozwala na analizę śladowych ilości pierwiastków w krótkim czasie pomiaru. W odróżnieniu od ICP MS, metoda ta jest
czasochłonna ze względu na analizę jednego pierwiastka w cyklu pomiarowym. • Optymalizacja metody
Zoptymalizowano program temperaturowy ustalając odpowiednie temperatury pirolizy i atomizacji charakterystyczne dla matrycy będącej roztworem
albumin.zależność absorbancji od
temperatury
00,050,1
0,150,2
2000 2100 2200 2300 2400 2500 2600
temperatura atomizacji
ab
so
rba
nc
ja
zależność absorbancji od temperatury
0
0,05
0,1
0,15
0,2
1200 1300 1400 1500 1600 1700
temperatura pirolizy
abso
rban
cja
Temperatura pirolizy wynosi 1550 °CTemperatura atomizacji wynosi 2400 °C
• Granice wykrywalności (GW) i oznaczalności (GO)
krzywa kalibracji dla Pt (woda)
y = 0,0003x + 0,0055
0,05
0,1
0,15
0,2
0,25
0 250 500 750 1000
stężęnie [ug/L]
po
wie
rzc
hn
ia p
iku
krzywa kalibracji dla Pt (1% HNO3)
y = 0,0002x + 0,0012
0
0,05
0,1
0,15
0 250 500 750 1000stężenie [ug/L)
pow
ierz
chni
a pi
ku
woda kwasGW [µg/L] 4 3 GO [µg/L] 13,3 10
• Wpływ Fe, Ni, Cu, Pd na oznaczanie platyny
Z otrzymanych wyników można wywnioskować iż metale takie jak Fe
i Ni nie wpływają na oznaczanie platyny, natomiast obecność palladu i
miedzi w roztworze w niedużym stopniu wpływa na jej sygnał.
• Badanie odzysku platyny w moczu i roztworze albumin
Odzysk platyny w moczu i roztworze albumin zbadano stosując metodę dodatku wzorca. Roztwór moczu rozcieńczono dziesięciokrotnie 1% HNO3,natomiast
roztwór albumin przygotowano poprzez rozpuszczenie odpowiedniej ich ilości w roztworze Tris-HCl o pH równym 7,4.
Odzysk w moczu: 101,5 % ± 1,1 %Odzysk w roztworze albumin: 90 % ± 1,5 %
Zastosowanie platyny
• Katalizatory samochodowe• Przemysł chemiczny• Przemysł szklarski• Przemysł elektryczny• Jubilerstwo• Medycyna/ Stomatologia
Wpływ platyny na organizm człowieka
• Alergia objawiająca się zmianami w układzie oddechowym• Zaburzenie funkcji nerek oraz narządu słuchu• Choroby nowotworowe• Obniżanie aktywności enzymów
Obie metody ICP MS i GF AAS mogą być stosowane do badania zawartości platyny w próbkach klinicznych (mocz i surowica). ICP MS charakteryzuje się niższymi
granicami wykrywalności i oznaczalności niż GF AAS. W ICP MS nie zaobserwowano interferencji w obecności Fe, Cu i Pd.
parametr opis
Komora mgielna Kwarcowa typu Scotta
Rozpylacz Kwarcowy typu Meinharda
Palnik plazmowy Kwarcowy
Częstotliwość 40 MHz
Rozdzielczość 0,7 ± 0,1 u
Moc generatora 1025 W
Napięcie na detektorze anologowym -2150.00 V
Napięcie na detektorze pulsowym 1500.00 V
Przepływ gazu plazmowego 15 L/min
Przepływ gazu pomocniczego 1,20 L/min
Przepływ gazu rozpylającego 0,84 L/min
Liczba przemiatań 5
Liczba powtórzeń 6
Szybkość dozowania próbki 1 mL/min
Cu 10 µg/L Pd 10 µg/L Fe 10µg/L
Rzeczywiste stężenie w próbce [µg/L]
4,251 ± 0,253 4,892 ± 0,231 4,993 ± 0,241
Oznaczona wartość stężenia [µg/L]
4,993 ± 0,241 4,435 ± 0,287 3,966 ± 0,230
Pt 5 µg/L
Fe 600 µg/L
Ni 600 µg/L
Pd 600 µg/L
Cu 400 µg/L
Wartość absorbancji dla czystej Pt
0,0553 ± 0,0037
0,0553 ± 0,0037
0,0553 ± 0,0037
0,0388 ± 0,0005
Wartość absorbancji dla Pt z metalem
0,0571 ± 0,0039
0,0574 ± 0,0084
0,0596 ± 0,0022
0,0409 ± 0,0005
Pt 200 µg/L
Pt 300 µg/L
____
____