Przedmioty do wyboru dla studentów III roku kierunku
biotechnologia medyczna I stopień w roku akademickim 2016/2017
Rok Semestr Moduł Symbol
fakultetu Przedmiot fakultetu
Liczba
godzin
Punkty
ECTS Zaliczenie roku
III
V biomedyczny BML/III/1
Surowice i szczepionki
Katedra i Zakład Mikrobiologii i
Wirusologii
30 3
6 punktów ECTS
z modułu
biomedycznego
V biomedyczny BML/III/2
Markery molekularne w
biotechnologii i medycynie
Katedra i Zakład Biologii
Molekularnej
30 3
V biomedyczny BML/III/3
Techniki detekcji sekwencji
docelowych
Zakład Biotechnologii i Inżynierii
Genetycznej
30 3
V biomedyczny BML/III/4
Substancje pochodzenia
roślinnego w medycynie
Katedra Farmakognozji i
Fitochemii
30 3
V biomedyczny BML/III/5
Metody i procedury
laboratoryjne kontrolowanego
rozrodu organizmów
Zakład Biologii Komórki
30 3
V biomedyczny BML/III/6
Zastosowanie modeli
komórkowych i tkankowych w
ocenie efektywności oraz
bezpieczeństwa kosmetyków i ich
składników in vitro
Zakład Kosmetologii
30 3
V biomedyczny BML/III/7
Biokosmeceutyki i
biofarmaceutyki
Zakład Biotechnologii i Inżynierii
Genetycznej
30 3
V molekularno-
biochemiczny BML/III/8
Mikromacierze w diagnostyce
genetycznej
Katedra i Zakład Biologii
Molekularnej
30 3
3 punkty ECTS z
modułu
molekularno-
biochemicznego
V molekularno-
biochemiczny BML/III/9
Techniki hybrydyzacji w
diagnostyce molekularnej
Katedra i Zakład Biologii
Molekularnej
30 3
V molekularno-
biochemiczny BML/III/10
Modelowanie struktury
przestrzennej cząsteczek
związków chemicznych i dużych
biocząsteczek.
Katedra Chemii Ogólnej i
Analitycznej
30 3
V biotechnologiczny BML/III/11
Mikrobiologia sanitarna
Katedra i Zakład Mikrobiologii i
Wirusologii
30 3 3 punkty ECTS z
modułu
biotechnologiczne
go V biotechnologiczny BML/III/12
Mikroorganizmy w procesach
bioremediacji
Katedra i Zakład Mikrobiologii i
Wirusologii
30 3
VI humanistyczny BML/III/1 Etyczne wyzwania biotechnologii
Katedra Nauk Społecznych 15 2
4 punkty ETCS z
modułu
humanistycznego VI humanistyczny BML/III/2
Historia filozofii
Zakład Historii Medycyny i
Farmacji
Katedry Nauk Społecznych
15 2
III
VI humanistyczny BML/III/3
Psychologia
Katedra Filozofii i Nauk
Humanistycznych, Medyków 12,
Katowice
15 2
VI biotechnologiczny BML/III/4
Identyfikacja GMO
Zakład Biotechnologii i Inżynierii
Genetycznej
30 3 3 punkty ECTS z
modułu
biotechnologiczne
go VI biotechnologiczny BML/III/5
Hodowla in vitro roślin
Zakład Biotechnologii i Inżynierii
Genetycznej
30 3
VI molekularno-
biochemiczny BML/III/6
Analiza działania kancerogenów
w układach biologicznych
Zakład Biologii Komórki
30 3
3 punkty ECTS z
modułu
molekularno-
biochemicznego
VI molekularno-
biochemiczny BML/III/7
Fotobiologia i fotomedycyna
Zakład Biologii Komórki 30 3
VI molekularno-
biochemiczny BML/III/8
Nutrigenomika
Katedra i Zakład Biologii
Molekularnej
30 3
VI molekularno-
biochemiczny BML/III/9
Ścieżki sygnałowe
Katedra i Zakład Biologii
Molekularnej
30 3
VI molekularno-
biochemiczny BML/III/10
Transkryptomika
Katedra i Zakład Biologii
Molekularnej
30 3
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: V
6. Nazwa modułu: Moduł biomedyczny Nazwa przedmiotu: Surowice i szczepionki
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Mikrobiologii i Wirusologii 41-200 Sosnowiec, ul. Jagiellońska 4
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Dr hab. n med. Tomasz J. Wąsik, prof. nadzw. SUM; [email protected]
10. Cel kształcenia: Zdobycie przez studentów wiedzy z zakresu wakcynologii, zapoznanie z kalendarzem szczepień obowiązkowych i dodatkowych oraz biotechnologicznym procesem wytwarzania surowic i szczepionek.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: znajomość mikrobiologii ogólnej i wirusologii; znajomość technik molekularnych
12. Efekty kształcenia
Numer efektu kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów
kształcenia dla obszaru
01 Ma ugruntowaną i poszerzoną wiedzę z zakresu prowadzenia diagnostyki molekularnej i immunodiagnostyki
K2_W11 M2_W03
02 Ma wiedzę na temat błędów w wykonywaniu prowadzonych badań i oznaczeń
K2_W19 M2_W07
03 Zna nowoczesne laboratoryjne techniki diagnostyczne stosowane w immunodiagnostyce
K2_W27 M2_W10
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 x
02 x
03 x
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Seminaria Liczba godzin
S1 Historia wakcynologii i podstawowe pojęcia z zakresu wakcynologii 2
S2 Budowa szczepionek 2
S3 Charakterystyka surowic odpornościowych 4
S4 Nowe kierunki rozwoju wakcynologii 4
S5 Kalendarz szczepień obowiązkowych i dodatkowych 2
S6 Szczepionki nowej generacji: szczepionki podjednostkowe, szczepionki DNA, szczepionki jadalne
4
S7 Szczepienia przeciwko HIV 2
S8 Szczepionki skojarzone 2
S9 Charakterystyka najczęściej stosowanych surowic antytoksycznych: przeciwbłoniczej, przeciwtężcowej, przeciw jadowi kiełbasianemu
4
S10 Biotechnologiczny proces wytwarzania szczepionek i surowic 4
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Seminarium Metoda problemowa: dyskusja dydaktyczna
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01 Kolokwium pisemne (zadania otwarte) Minimum 60%
02 Kolokwium pisemne (zadania otwarte) Minimum 60%
03 Kolokwium pisemne (zadania otwarte) Minimum 60%
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 30
konsultacje 5
Udział w zaliczeniu 3
łącznie 38
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminariów 15
przygotowanie do kolokwium 20
łącznie 35
Łącznie 73
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
2
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
1
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Gołąb J, Jakóbisiak M, Lasek W, Stokłosa T. Immunologia. PWN Warszawa 2009 2. Kańtoch M. Wirusologia lekarska. PZWL Warszawa 1998
19.2. Uzupełniająca 1. Murray PR, Rosenthal KS, Pfaller MA. Mikrobiologia. Wydawnictwo Medyczne Elsevier Urban &
Partner, Wrocław, 2011. 2. Collier L, Oxford J. Wirusologia. PZWL Warszawa 2001
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna - 20 osób
20.2. Materiały do zajęć Zeszyt, długopis
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Seminaria sala nr 212, Katedra i Zakład Mikrobiologii i Wirusologii - ul. Jagiellońska 4, Sosnowiec
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Katedra i Zakład Mikrobiologii i Wirusologii, ul. Jagiellońska 4, Sosnowiec Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
01
Nie spełnia wymagań na ocenę dostateczną
Wymienia podstawowe etapy diagnostyki molekularnej i immunodiagnostyki bez podania ich charakterystyki
Wymienia podstawowe etapy diagnostyki molekularnej i immunodiagnostyki z podaniem i omówieniem ich podstawowej charakterystyki
Wymienia etapy diagnostyki molekularnej i immunodiagnostyki z podaniem i omówieniem ich charakterystyki oraz procedur wykonania
02
Nie spełnia wymagań na ocenę dostateczną
Ma podstawową wiedzę na temat błędów w wykonywaniu prowadzonych badań bez podania ich przyczyn i charakterystyki
Ma wiedzę na temat błędów w wykonywaniu prowadzonych badań z ogólnym podaniem ich przyczyn i charakterystyki
Ma ugruntowaną wiedzę na temat błędów w wykonywaniu prowadzonych badań z rozumowym podaniem ich przyczyn i charakterystyki
03
Nie spełnia wymagań na ocenę dostateczną
Wymienia podstawowe techniki diagnostyczne i identyfikacyjne stosowane w immunodiagnostyce bez podania ich charakterystyki
Wymienia techniki diagnostyczne i identyfikacyjne stosowane w immunodiagnostyce z podaniem i omówieniem ich podstawowej charakterystyki
Wymienia techniki diagnostyczne i identyfikacyjne stosowane w immunodiagnostyce z podaniem i omówieniem ich charakterystyki oraz procedurą wykonania
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: V
6. Nazwa modułu: Moduł biomedyczny Nazwa przedmiotu: Markery molekularne w biotechnologii i medycynie
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Biologii Molekularnej, ul. Jedności 8, 41-200 Sosnowiec, tel. (0-32) 364-10-20, e-mail: [email protected], http://www.biolmol.sum.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Prof. dr hab. n. med. Urszula Mazurek [email protected]
10. Cel kształcenia: Zapoznanie studentów z grupami markerów molekularnych stosowanych w diagnostyce i terapii oraz w wykrywaniu organizmów transgenicznych. Opanowanie przez studenta wiedzy i umiejętności w zakresie planowania analizy markerów molekularnych z wykorzystaniem podstawowych metod diagnostycznych oraz opanowanie umiejętności interpretacji wyników analizy molekularnej.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Wiedza: Student posiada wiedzę z zakresu biologii molekularnej z elementami diagnostyki molekularnej oraz biochemii Umiejętności: Potrafi interpretować wyniki badań uzyskanych technikami biologii molekularnej w podstawowym zakresie Inne kompetencje: Potrafi pracować w zespole
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Wskazuje i charakteryzuje markery molekularne chorób nowotworowych, metabolicznych, infekcyjnych w personalizacji leczenia Ocenia potencjalne zagrożeń zdrowia na podstawie wyników oznaczeń biomarkerów wrażliwości
K1_W07 K1_W15 K1_W19 K1_W20
M1_W02 M1_W03 M1_W03 M1_U04
02 Wskazuje markery molekularne przydatne w biotechnologii, stosowane w terapii molekularnie ukierunkowanej. Planuje analizę markerów molekularnych
K1_W29 K1_U17 K1_U18 K1_U19
M1_W07 M1_U04 M1_U04 M1_U05
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
0
14.2. Forma zajęć: seminaria
S1 Markery molekularne w badaniach in vitro i in situ. 2
S2 Biomarkery w ocenie narażenia środowiskowego populacji. 2
S3 Markery i metody stosowane w ocenie genotoksyczności 2
S4
Markery molekularne schorzeń nowotworowych. Metody
typowania genów różnicujących tkanki prawidłowe i patologiczne
w terapii molekularnie ukierunkowanej
2
S5 Biomarkery schorzeń metabolicznych. 2
S6 Markery molekularne w diagnostyce zaburzeń czynności gruczołów wydzielania wewnętrznego.
2
S7 Biomarkery wirusowego zapalenia wątroby – diagnostyka różnicowa czynników infekcyjnych
2
S8 Molekularne markery wrażliwości osobniczej na działanie ksenobiotyków.
2
S9 Markery molekularne w medycynie regeneracyjnej 2
S10 Markery molekularne oraz cele terapii genowej w schorzeniach
układu sercowo-naczyniowego
2
S11 Markery molekularne w personalizacji osiągnięć sportowych i
wykrywaniu dopingu genetycznego
2
S12 Zastosowanie markerów molekularnych w wykrywaniu żywności
modyfikowanej genetycznie
2
S13 Markery molekularne w ksenotransplantacji 2
S14 Kody kreskowe DNA jako markery molekularne w ekologii 2
S15 Projektowanie analizy molekularnej w odpowiedzi na postawiony
problem 2
30
Łącznie 30 godzin
14.3. Forma zajęć: ćwiczenia … 0
Łącznie 0
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład
15.2. seminaria Narzędzia bioinformatyczne, prezentacje multimedialne, metody przypadków, metody sytuacyjne, dyskusje dydaktyczne
15.3.
15.4.
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 Zadania zamknięte Test zaliczeniowy
02 Zaplanowanie analizy molekularnej w odpowiedzi na postawiony problem
Zaliczony projekt analizy
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 15x2=30
obecność na teście zaliczeniowym 2
konsultacje 10
łącznie 42
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do zajęć seminaryjnych 10
Przygotowanie sprawozdania 8
Przygotowanie do testu zaliczeniowego 10
łącznie 28
Łącznie 70
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
3
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Ciechanowicz A., Kokot F. (red): Genetyka molekularna w chorobach wewnętrznych. PZWL, Warszawa
2009
2. Bal J. (red): Biologia molekularna w medycynie, elementy genetyki klinicznej. PWN, Warszawa 2006
3. Dembińska-Kieć A., Naskalski J. (red): Diagnostyka Laboratoryjna z elementami biochemii klinicznej.
Urban&Partner, Wrocław 2002
19.2. Uzupełniająca 1. Nishevitha NS, Angeline T, Nirmala Jeyaraj. Endothelial nitric oxide synthase (eNOS) Glu298 Asp
polymorphism (G894T) among south Indians. Indian J Med Res 129, January 2009, pp 68-71 2. Żebrowski M, Dębiec R. Współczesne badania genetycznego podłoża choroby wieńcowej. Polski
Przegląd Kardiologiczny 2005, 7(3):261-264 3. Ewa Straburzyńska-Migaj. Czy nadszedł już czas na diagnostykę genetyczną w niewydolności
serca? Kardiol Pol 2007; 65: 63-70 4. Schmidt M. Comet Assay. www.kucharczyk.com.pl
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna - 20 osób
20.2. Materiały do zajęć zagadnienia do przygotowania na seminaria
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
Sosnowiec, ul. Jedności 8.
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Sosnowiec, ul. Jedności 8 – zgodnie z harmonogramem dostępnym na stronie internetowej Katedry i Zakładu Biologii Molekularnej Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5 Efekt 01
poniżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 80% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
(powyżej 90% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
Efekt 02
Nie potrafi zaplanować analizy markerów molekularnych (nie przedstawia projektu badań)
Zaplanowanie
samodzielnie analizy
markerów molekularnych
sprawia mu duże trudności
(często korzysta z pomocy
prowadzącego,
przedstawia niekompletny
projekt)
Planuje analizę markerów molekularnych najczęściej samodzielnie (rzadko korzysta z pomocy prowadzącego, przedstawia projekt zawierający nieliczne błędy
Planuje analizę markerów
molekularnych samodzielnie
(przedstawia kompletny
projekt analizy)
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo
dobry”
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: V
6. Nazwa modułu: Moduł biomedyczny Nazwa przedmiotu: Techniki detekcji sekwencji docelowych
7. Status przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca przedmiot: Zakład Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej SUM 41-200 Sosnowiec ul. Jedności 8 tel. 32 364 12 73 http://biotechnologia.sum.edu.pl/
9. Prowadzący przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Dr hab. Ilona Bednarek, [email protected]
10. Cel kształcenia: Celem przedmiotu jest przybliżenie studentom możliwości detekcji i analizy sekwencji docelowych kwasów nukleinowych i białek w oparciu o szeroko pojęte techniki hybrydyzacji. Zaznajomienie z możliwościami ich wykorzystania w typowaniu mikroorganizmów, diagnostyce chorób genetycznych czy nowotworowych. Wiedza zdobyta na wskazanym przedmiocie ma dać podstawy do samodzielnego doboru techniki analizy, projektowania, znakowania i analizy sond molekularnych oraz przeprowadzania testu hybrydyzacji z ich zastosowaniem.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji:
Student powinien posiadać podstawową wiedzę z zakresu biologii molekularnej, biochemii, genetyki, mikrobiologii, inżynierii genetycznej oraz biotechnologii molekularnej. Zna zastosowanie i potrafi posługiwać się podstawowymi technikami analizy instrumentalnej oraz analizy kwasów nukleinowych i białek. Potrafi prowadzić hodowle bakteryjne, a także analizować i interpretować uzyskane wyniki badań.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01
Student posiada gruntowną wiedzę z zakresu budowy i właściwości fizykochemicznych kwasów nukleinowych.
Potrafi szczegółowo scharakteryzować ich funkcje biologiczne oraz wskazać metody i enzymy służące
do ich wielokierunkowej analizy.
K1_W01 K1_W03 K1_W04 K1_W06 K1_W08 K1_W09 K1_W16 K1_W18 K1_U05 K1_U38 K1_U44 K1_U45 K1_U49 K1_K01 K1_K12 K1_K16
M1_W01 M1_W03 M1_U01 M1_U10 M1_U12 M1_U14 M1_K01 M1_K06 M1_K08
02
Student jest zaznajomiony z technikami i zastosowaniem mapowania genomów, wie jaką rolę spełniają
w tej dziedzinie techniki hybrydyzacji. Zna pojęcie markera genetycznego oraz potrafi wskazać
rodzaje i znaczenie takich sekwencji.
K1_W16 K1_W19 K1_W33 K1_U09 K1_U10 K1_U11 K1_U37 K1_U38 K1_U40 K1_U45 K1_K01 K1_K09 K1_K16
M1_W03 M1_W09 M1_U01 M1_U02 M1_U10 M1_U12 M1_K01 M1_K05 M1_K08
03
Student wykazuje szczegółową znajomość i umiejętność zastosowania metod detekcji sekwencji docelowych kwasów nukleinowych i białek, opartych o techniki
hybrydyzacyjne. Zna sposoby konstruowania i detekcji sond molekularnych oraz ich analizy in silico.
K2_W05 K1_W16 K1_W18 K1_W19 K1_W32 K1_W38 K1_W46 K1_U10 K1_U11 K1_U22 K1_U23 K1_U37 K1_U38 K1_U40 K1_U49 K1_K03 K1_K12
M1_W01 M1_W03 M1_W09 M1_W10 M1_U01 M1_U02 M1_U06 M1_K02 M1_K06
04
Posiada szeroką wiedzę z zakresu możliwości zastosowanie nowoczesnych metod molekularnych (opartych o hybrydyzację biomolekuł) w typowaniu
mikroorganizmów, diagnostyce i terapii chorób genetycznych czy nowotworowych.
K1_W14 K1_W16 K1_W19 K1_W33 K1_U07 K1_U09 K1_U18 K1_U20 K1_U40 K1_U45 K1_K01 K1_K03 K1_K09
M1_W03 M1_W09 M1_U01 M1_U04 M1_U05 M1_U10 M1_U12 M1_K01 M1_K05
05
Student potrafi samodzielnie analizować i interpretować otrzymane wyniki analizy oraz przedstawiać je
w formie ustnej i pisemnej. Korzysta z obcojęzycznego piśmiennictwa.
K1_W16 K1_W45 K1_U10 K1_U21 K1_U23 K1_U44 K1_U45 K1_U46 K1_U48 K1_U49
M1_W03 M1_U01 M1_U06 M1_U12 M1_U13 M1_U14
06
Student potrafi pracować w grupie, jest zaangażowany w realizację zleconych zadań.
Posiada umiejętność zaplanowania danego badania/projektu naukowego, wykazując się przy tym
kreatywnością oraz znajomością prawnych uwarunkowań niniejszej działalności.
K1_W18 K1_W22 K1_W24 K1_W31 K1_W33 K1_W45 K1_U14 K1_U22 K1_U23 K1_U38 K1_U41 K1_K01 K1_K04 K1_K05 K1_K06 K1_K07 K1_K08 K1_K12 K1_K14 K1_K16
M1_W03 M1_W04 M1_W08 M1_W09 M1_U03 M1_U06 M1_U10 M1_K01 M1_K03 M1_K04 M1_K05 M1_K06 M1_K07 M1_K08
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
03 X
04 X
05 X
06 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
Łącznie 0
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1 Charakterystyka i techniki analizy genów i genomów 2
S2 Podstawy hybrydyzacji kwasów nukleinowych 2
S3 Odmiany i zastosowanie technik hybrydyzacji 2
S4 Sondy molekularne – właściwości, metody syntezy, znakowania i oczyszczania
2
S5 Sposoby detekcji sond molekularnych – kolorymetria, autoradiografia, fluorescencja, luminescencja
2
S6 Natura i zastosowanie kropek kwantowych (ang. Quantum Dots) 2
S7 Techniki hybrydyzacji in situ 2
S8 Mapowanie genomów 2
S9 Biblioteki genowe i genomowe i ich screening 2
S10 Podstawy analizy filogenetcznej . Idea „zegarów molekularnych” 2
S11 Molekularne techniki typowania mikroorganizmów 2
S12 Zasoby informacji o genach – sposoby i cele pracy z molekularnymi bazami danych
2
S13 Analiza sekwencji in silico 2
S14 Testy hybrydyzacyjne w diagnostyce molekularnej chorób nowotworowych, zakaźnych i genetycznych
2
S15 Detekcja i analiza białek w oparciu o techniki hybrydyzacji: Western Blot, ELISA oraz Real Time Protein™
2
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: Ćwiczenia
Łącznie 0
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład -
15.2. Seminarium Prelekcja, pokaz, dyskusja problemowa, analiza problemowa, metody programowane z wykorzystaniem komputera
15.3. Ćwiczenie -
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 Kolokwium pisemne (opisowe) w trakcie
seminarium. Końcowy pisemny test zaliczeniowy weryfikujący wiedzę i umiejętności studenta.
Udzielenie prawidłowych i wyczerpujących odpowiedzi na minimum 60% pytań w ramach kolokwiów cząstkowych i testu
zaliczeniowego.
02 Kolokwium pisemne (opisowe) w trakcie
seminarium. Końcowy pisemny test zaliczeniowy weryfikujący wiedzę i umiejętności studenta.
Udzielenie prawidłowych i wyczerpujących odpowiedzi na minimum 60% pytań w ramach kolokwiów cząstkowych i testu
zaliczeniowego.
03 Kolokwium pisemne (opisowe) w trakcie
seminarium. Końcowy pisemny test zaliczeniowy weryfikujący wiedzę i umiejętności studenta.
Udzielenie prawidłowych i wyczerpujących odpowiedzi na minimum 60% pytań w ramach kolokwiów cząstkowych i testu
zaliczeniowego.
04 Zaliczenie ustne w trakcie seminarium.
Końcowy pisemny test zaliczeniowy weryfikujący wiedzę i umiejętności studenta.
Udzielenie prawidłowych i wyczerpujących odpowiedzi na minimum 60% pytań w ramach
zaliczenia ustnego i testu zaliczeniowego.
05
Analiza i interpretacja danych wyników badań. Opracowanie i prezentacja treści tekstów
źródłowych (w języku angielskim) dotyczących zagadnień realizowanych w ramach zajęć
seminaryjnych.
Prawidłowe i rzetelne opracowanie danej
publikacji naukowej.
06 Opracowanie i interpretacja w grupie wyników
danych analiz oraz ich ustna prezentacja.
Prawidłowe i rzetelne opracowanie danych wyników, aktywna współpraca w grupie.
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 30
Udział w zaliczeniu 3
konsultacje 7
łącznie 40
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminarium 15
przygotowanie do kolokwium z seminariów 15
Łącznie 30
Łącznie 70
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
1
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
0
19. Literatura
19.1. Podstawowa: 1. Bal J. Biologia molekularna w Medycynie. Elementy Genetyki Klinicznej. PWN 2011. 2. Bednarek I. (red.). Inżynieria genetyczna i terapia genowa. Wydawnictwo SUM 2008. 3. Bednarek I. (red.). Wybrane zagadnienia naukowo – badawcze inżynierii genetycznej
i terapii genowej. Wydawnictwo SUM 2009. 4. Brown T.A. Genomy. PWN 2012. 5. Turner P.C., McLennan A.G., Bates M. R., White M.H.R. Biologia molekularna. Krótkie wykłady.
PWN 2009.
19.2. Uzupełniająca: 1. Buchowicz J. Biotechnologia molekularna. PWN 2009. 2. Sambrook J., Russell D.W.: Molecular Cloning: A Laboratory Manual, the third edition. Cold Spring
Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York 2001. 3. Strachan T., Read A.P.: Human Molecular Genetics 2. New York: Wiley-Liss 1999.
20. Inne przydatne informacje o przedmiocie
20.1. Liczebność grup Ustalana zarządzeniami JM Rektora
20.2. Materiały do zajęć Wybrane materiały w formie elektronicznej umieszczane są na stronie internetowej Zakładu (poniżej)
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
Sala seminaryjna Zakładu Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Zakład Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne Strona internetowa Zakładu: biotechnologia.sum.edu.pl (zakładka: studenci)
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01
Student nie zna budowy, właściwości
lub/i funkcji biologicznej kwasów nukleinowych.
lub/i Nie zna metod i
enzymów, dzięki którym można zanalizować materiał genetyczny
organizmów. lub/i
Student nie jest obecny na wszystkich godzinach
seminaryjnych.
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych.
Zna i potrafi ogólnie scharakteryzować
budowę, właściwości i funkcję kwasów
nukleinowych. Potrafi wymienić
metody, dzięki którym można zanalizować materiał genetyczny
organizmów.
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych.
Zna i potrafi scharakteryzować
budowę, właściwości i funkcję kwasów
nukleinowych. Potrafi wymienić i opisać większość
omawianych metod, dzięki którym można zanalizować materiał
genetyczny organizmów.
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych.
Zna i potrafi dokładnie scharakteryzować
budowę, właściwości i funkcję kwasów
nukleinowych. Potrafi wymienić
i szczegółowo opisać wszystkie omawiane
metody analizy materiału
genetycznego organizmów.
Efekt 02
Student nie zna, bądź błędnie charakteryzuje
techniki mapowania genomów.
lub/i Nie potrafi wymienić lub/i opisać rodzajów
markerów stosowanych do konstrukcji map
genetycznych. lub/i
Student nie jest obecny na wszystkich godzinach
seminaryjnych.
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych.
Zna i potrafi ogólnie scharakteryzować
większość z omawianych technik
mapowania genomów. Potrafi opisać różne rodzaje markerów stosowanych do konstrukcji map genetycznych.
Popełnia przy tym błędy w niewielki
sposób wpływające na omawiane treści
programowe.
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych.
Zna i potrafi scharakteryzować
wszystkie z omawianych technik
mapowania genomów. Potrafi opisać różne rodzaje markerów stosowanych do konstrukcji map
genetycznych i ocenić przydatność każdego
typu markera.
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych.
Zna i potrafi dokładnie scharakteryzować
wszystkie z omawianych technik
mapowania genomów oraz podać
ograniczenia metod mapowania. Potrafi opisać różne rodzaje
markerów stosowanych do konstrukcji map
genetycznych i ocenić przydatność każdego
typu markera.
Efekt 03
Student nie zna bądź myli podstawowe pojęcia z zakresu
hybrydyzacji kwasów nukleinowych i białek.
lub/i Nie zna bądź błędnie
charakteryzuje metody syntezy, znakowania i
detekcji kwasów nukleinowych.
lub/i Nie zna metod analizy
sekwencji in silico. lub/i
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych
i ćwiczeniowych. Wykazuje ogólną
znajomość charakterystyki
zjawiska hybrydyzacji biomolekuł, zna
czynniki wpływające na stabilność hybryd.
Zna większość omawianych metod
syntezy, znakowania i
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych
i ćwiczeniowych. Wykazuje znajomość
charakterystyki zjawiska hybrydyzacji
biomolekuł, zna czynniki wpływające na
stabilność hybryd. Zna omawiane metody syntezy, znakowania i
detekcji kwasów nukleinowych.
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych
i ćwiczeniowych. Wykazuje szczegółową
znajomość charakterystyki
zjawiska hybrydyzacji biomolekuł, wie jakie
czynniki, i na jakiej zasadzie, kształtują
stabilność hybryd. Zna wszystkie omawiane
metody syntezy, znakowania i detekcji
Student nie jest obecny na wszystkich godzinach
seminaryjnych i ćwiczeniowych.
detekcji kwasów nukleinowych.
Popełnia przy tym błędy w niewielki
sposób wpływające na omawiane treści
programowe. Z pomocą
prowadzącego zajęcia potrafi analizować
sekwencje nukleotydowe in silico.
Potrafi analizować sekwencje
nukleotydowe in silico.
kwasów nukleinowych.
Wie jak dobrać typ znacznika do
odpowiedniej sondy i właściwego testu
hybrydyzacji. Potrafi analizować sekwencje nukleotydowe in silico.
Efekt 04
Student nie zna możliwości
zastosowania technik hybrydyzacyjnych
w typowaniu mikroorganizmów,
diagnostyce i terapii chorób genetycznych czy nowotworowych.
lub/i Student nie jest obecny na wszystkich godzinach
seminaryjnych i ćwiczeniowych.
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych
i ćwiczeniowych. Zna ogólne możliwości
wykorzystania technik hybrydyzacyjnych
w typowaniu mikroorganizmów,
diagnostyce i terapii chorób genetycznych czy nowotworowych, popełniając przy tym
błędy nieznacznie wpływające na
omawiane treści programowe.
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych
i ćwiczeniowych. Zna możliwości
wykorzystania technik hybrydyzacyjnych
w typowaniu mikroorganizmów,
diagnostyce i terapii chorób genetycznych czy nowotworowych i
potrafi wskazać korzyści wynikające z
ich zastosowania.
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych
i ćwiczeniowych. Dokładnie zna
możliwości i zasadność wykorzystania technik
hybrydyzacyjnych w typowaniu
mikroorganizmów, diagnostyce i terapii chorób genetycznych czy nowotworowych,
potrafi wskazać korzyści wynikające z
ich zastosowania.
Efekt 05
Student nie potrafi samodzielnie wykonać
ćwiczenia wg załączonej instrukcji.
i/lub Pracuje w sposób
nieodpowiedzialny, niestaranny,
stwarzający zagrożenie dla jego samego oraz osób znajdujących się
w jego otoczeniu. i/lub
Nie potrafi gromadzić i interpretować wyników
przeprowadzonych badań. i/lub
Nie przygotowuje sprawozdań
z przeprowadzonych
Student jest obecny na wszystkich
godzinach seminaryjnych
i ćwiczeniowych. Z niewielką pomocą
prowadzącego zajęcia potrafi wykonać
ćwiczenie wg załączonej instrukcji,
pracując przy tym w sposób staranny, zgodny z zasadami BHP.
Popełnia błędy mogące w znacznym stopniu wpływać na wynik
prowadzonych badań. Gromadzi i interpretuje wyniki prowadzonych badań i samodzielnie
Student jest obecny na wszystkich godzinach
seminaryjnych i ćwiczeniowych.
Samodzielnie wykonuje ćwiczenie wg
załączonej instrukcji, pracując
przy tym w sposób staranny, zgodny z zasadami BHP.
Popełnia błędy mogące w nieznacznym stopniu
wpływać na wynik prowadzonych badań.
Gromadzi i interpretuje wyniki prowadzonych badań i samodzielnie
przygotowuje sprawozdania z
Student jest obecny na wszystkich godzinach
seminaryjnych i ćwiczeniowych.
Samodzielnie wykonuje ćwiczenie
wg załączonej instrukcji, pracując przy tym w sposób staranny, zgodny z zasadami BHP. Jest kreatywny, przedsiębiorczy,
potrafi rozwiązywać problemy związane z
wykonywaniem powierzonego
zadania. Rzetelnie gromadzi i
interpretuje wyniki przeprowadzonych
ćwiczeń laboratoryjnych.
lub/i Student nie jest obecny na wszystkich godzinach
seminaryjnych i ćwiczeniowych.
przygotowuje sprawozdania z ćwiczeń
laboratoryjnych. Sprawozdania
zawierają jednak braki lub błędy, które w
znaczny sposób wpływają na możliwość interpretacji wyników
doświadczenia.
ćwiczeń laboratoryjnych.
badań oraz samodzielnie przygotowuje
sprawozdania z ćwiczeń
laboratoryjnych.
Efekt 06
Student nie potrafi pracować w grupie lub/i nie jest zaangażowany
w realizację powierzonych zadań.
lub/i Nie potrafi zaplanować
nawet najprostszego eksperymentu/badania, nie wie co czego służą
poszczególne urządzenia
czy odczynniki w laboratorium molekularnym.
lub/i Student nie jest obecny na wszystkich godzinach
seminaryjnych.
Student jest obecny na wszystkich zajęciach
seminaryjnych. Potrafi współpracować
z innymi studentami lecz ma problemy w
samodzielnej realizacji powierzonych zadań.
Przy planowaniu danego eksperymentu popełnia błędy mogące
znacznie wpłynąć na jego przebieg oraz
wynik. Zna zastosowanie
poszczególnych urządzeń i odczynników
w laboratorium molekularnym.
Student jest obecny na wszystkich zajęciach
seminaryjnych. Potrafi współpracować
z innymi studentami oraz samodzielnie
realizować powierzone zadania. Przy
planowaniu danego eksperymentu popełnia błędy,
nieznacznie wpływające na jego przebieg oraz wynik.
Zna zastosowanie poszczególnych
urządzeń i odczynników w laboratorium
molekularnym.
Student jest obecny na wszystkich
zajęciach seminaryjnych.
Potrafi współpracować z innymi studentami
oraz samodzielnie realizować powierzone
zadania. Pomaga innym w zrozumieniu
oraz rozwiązaniu problemów
badawczych. Potrafi samodzielnie
zaplanować dany eksperyment.
Zna zastosowanie poszczególnych
urządzeń i odczynników w laboratorium
molekularnym.
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: V
6. Nazwa modułu: Moduł biomedyczny Nazwa przedmiotu: Substancje pochodzenia roślinnego w medycynie
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot:
Katedra Farmakognozji i Fitochemii 41-200 Sosnowiec, ul. Jagiellońska 4
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Dr hab. n. farm. Ilona Kaczmarczyk-Sedlak
10. Cel kształcenia: Celem kształcenia jest zapoznanie studentów z występowaniem, różnorodnością chemiczną metabolitów pierwotnych i wtórnych produkowanych przez rośliny i ich zastosowaniem w medycynie.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Wiadomości z zakresu biologii roślin, chemii ogólnej i chemii organicznej.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 opisuje budowę i funkcje biologiczne substancji pochodzenia roślinnego, w tym białek, węglowodanów, lipidów i witamin
K1_W03 M1_W01
02 rozróżnia metody prowadzące do identyfikacji nowych substancji leczniczych, jak również wskazuje możliwość zastosowania metod i procesów biotechnologicznych do wytwarzania substancji farmakologicznie czynnych
K1_W25 M1_W05
03 definiuje możliwości wykorzystania materiału biologicznego, w tym roślinnego w biotechnologii
K1_W18 M1_W03
04 posiada podstawową wiedzę na temat potencjału produkcyjnego żywych komórek i organizmów
K1_W43 -
05 zna i opisuje szlaki metaboliczne prowadzące do syntezy wybranych metabolitów pierwotnych i wtórnych
K1_W44 -
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne Inne e-learning
01 X
02 X
03 X
04 X
05 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Seminaria Liczba godzin
S1 Zastosowanie substancji pochodzenia roślinnego w medycynie oraz ich podział
4
S2 Surowce roślinne i leki zawierające węglowodany i śluzy 4
S3 Surowce roślinne i leki zawierające substancje białkowe i oleiste 4
S4 Surowce roślinne i leki zawierające barwniki 4
S5 Surowce roślinne i leki zawierające związki fenolowe i garbniki 4
S6 Surowce roślinne i leki zawierające olejki eteryczne 4
S7 Surowce roślinne i leki zawierające inne związki 4
S8 Zaliczenie przedmiotu 2
Łącznie
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Seminaria Seminarium, prelekcja, prezentacja multimedialna
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01 Ocena aktywności na zajęciach
60% poprawnych odpowiedzi na zadane pytania
02 Ocena aktywności na zajęciach
60% poprawnych odpowiedzi na zadane pytania
03 Ocena aktywności na zajęciach
60% poprawnych odpowiedzi na zadane pytania
04 Ocena aktywności na zajęciach
60% poprawnych odpowiedzi na zadane pytania
05 Ocena aktywności na zajęciach
60% poprawnych odpowiedzi na zadane pytania
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 30h
konsultacje 5
łącznie 35
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminariów 30
przygotowanie do sprawdzianu zaliczeniowego 5
łącznie 35
Łącznie 70
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
1 ECTS
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
1 ECTS
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. S. Kohlmünzer: Farmakognozja, Wydawnictwo Lekarskie PZWL, Warszawa 2007 i starsze 2. A. Kołodziejczyk: Naturalne związki organiczne. Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa, 2004 3. Farmakopea Polska 4. H. Strzelecka i in.: „Chemiczne metody badań roślinnych surowców leczniczych”, PZWL, Warszawa 1982 5. K. Głowniak (red.) : „Ćwiczenia z fitochemii” Lublin 2006
19.2. Uzupełniająca 1. I. Matławska (red.) :Farmakognozja, Uniwersytet Medyczny im. Karola Marcinkowskiego w Poznaniu,
Poznań 2008
2.S. Malepszy (red.): Biotechnologia roślin, Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 2001
3. Wybrane przez prowadzących zajęcia artykuły naukowe z literatury fachowej
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna – 20 osób
20.2. Materiały do zajęć
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Katedra Farmakognozji i Fitochemii
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Katedra Farmakognozji i Fitochemii Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01 Brak elementarnej wiedzy z zakresu budowy i funkcji substancji pochodzenia roślinnego
Wiedza na poziomie 60% z zakresu budowy i funkcji substancji roślinnych o znaczeniu medycznym
Wiedza na poziomie 75% z zakresu budowy, pochodzenia i funkcji substancji roślinnych o znaczeniu medycznym, znajomość wzorów strukturalnych większości poznanych substancji
Wiedza na poziomie 90% z zakresu budowy, pochodzenia, funkcji, działania i zastosowania w medycynie substancji pochodzenia roślinnego, znajomość wzorów strukturalnych wszystkich poznanych substancji
Efekt 02 Brak elementarnej wiedzy z zakresu rozróżnia metody prowadzących do identyfikacji nowych substancji leczniczych czynnych
Wiedza na poziomie 60% z zakresu rozróżnia metod prowadzące do identyfikacji nowych substancji leczniczych
Wiedza na poziomie 75% z zakresu rozróżnia metod prowadzących do identyfikacji nowych substancji leczniczych, umiejętność wymienienia metod i procesów biotechnologicznych do wytwarzania substancji farmakologicznie czynnych
Wiedza na poziomie 90% na temat rozróżnia metod prowadzących do identyfikacji nowych substancji leczniczych, umiejętność doboru i projektowania metod i procesów biotechnologicznych do wytwarzania substancji farmakologicznie czynnych
Efekt 03 Brak elementarnej wiedzy wykazuje zrozumienie możliwości
Wiedza na poziomie 60% z zakresu możliwości wykorzystania
Wiedza na poziomie 75% na temat możliwości wykorzystania
Wiedza na poziomie 90% z zakresu możliwości wykorzystania
wykorzystania surowców roślinnych w biotechnologii
surowców roślinnych w biotechnologii
surowców roślinnych w biotechnologii
surowców roślinnych w biotechnologii
Efekt 04 Brak elementarnej wiedzy z zakresu metabolizmu roślin
Wiedza na poziomie 60% z zakresu metabolizmu roślinnego
Wiedza na poziomie 75% na temat metabolizmu roślinnego i wykorzystania produktów przemian metabolicznych do celów leczniczych
Wiedza na poziomie 90% z zakresu metabolizmu roślinnego i wykorzystania produktów przemian metabolicznych do celów leczniczych
Efekt 05 Brak elementarnej wiedzy z zakresu szlaków metabolicznych prowadzących do syntezy wybranych metabolitów pierwotnych i wtórnych
Wiedza na poziomie 60% z zakresu szlaków metabolicznych prowadzących do syntezy wybranych metabolitów pierwotnych i wtórnych
Wiedza na poziomie 75% na temat szlaków metabolicznych prowadzących do syntezy wybranych metabolitów pierwotnych i wtórnych
Wiedza na poziomie 90% z zakresu szlaków metabolicznych prowadzących do syntezy wybranych metabolitów pierwotnych i wtórnych
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo
dobry”
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: V
6. Nazwa modułu: Moduł biomedyczny Nazwa przedmiotu: Metody i procedury laboratoryjne kontrolowanego rozrodu organizmów
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Zakład Biologii Komórki, 41-200 Sosnowiec, ul. Jedności 8
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Dr hab.n.med.Małgorzata Latocha, [email protected]
10. Cel kształcenia: Zapoznanie studentów z molekularnymi podstawami rozrodu, obecnie stosowanymi technikami w badaniach in vitro nad regulacją rozrodu. Zdobycie umiejętności interpretacji informacji zawartych w publikacjach naukowych i prowadzenia dyskusji.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: wiedza z zakresu podstaw biologii komórki
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01
Posiada wiedzę z zakresu molekularnych podstaw procesów związanych z rozrodem oraz obecnie stosowanych technik w badaniach in vitro nad regulacją rozrodu.
K1_W07 K1_W14 K1_W18 K1_W43
M1_W01 M1_W03 M1_W03
02 Posiada umiejętność interpretacji informacji zawartych w publikacjach naukowych. Umiejętność samodzielnego przygotowania prezentacji i prowadzenia dyskusji.
K1_U21 K1_U44 K1_U45 K1_U47 K1_49
M1_U06 M1_U12 M1_U12 M1_U13 M1_U14 M1_U14
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 x
02 x
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
Łącznie -
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1 Zasady funkcjonowania narządów i komórek rozrodczych. Oogeneza i spermatogeneza. Wpływ czynników endogennych i środowiskowych na gametogenezę
2
S2 Molekularne podstawy interakcji pomiędzy plemnikiem a komórką jajową
2
S3 Rozwój embrionalny ssaków i człowieka. Imprinting genomowy w komórkach rozrodczych i zarodku. Molekularne podstawy patologii ciąży
2
S4 Przyczyny męskiej niepłodności. Rekomendacje dotyczące diagnostyki i leczenia niepłodności typu męskiego
2
S5 Przyczyny żeńskiej niepłodności. Rekomendacje dotyczące diagnostyki i leczenia niepłodności spowodowanej czynnikiem żeńskim
2
S6 Badania cytogenetyczne komórek rozrodczych u pacjentów z niepowodzeniem rozrodu. Techniki wspomaganego rozrodu w niepłodności (ART)
2
S7
Metody oceny zdolności zapładniających nasienia oraz powszechnego wykorzystania w hodowli metody podziału plemników z odpowiednim chromosomem płciowym. Nowoczesne metody biochemicznej i fluorescencyjnej oceny właściwości biologicznych plemników. Rozwiązania technologiczne dotyczące separacji plemników z chromosomem X i Y
2
S8 Konserwacja nasienia. Wpływ warunków przechowywania nasienia różnych gatunków na jego jakość
2
S9 Metodyka i ocena stosowanych w endokrynologii badań nad izolowanymi komórkami narządów rozrodczych oraz technika hodowli izolowanych komórek i tkanek
2
S10 Ocena wpływu środowiska na regulacje związane z rozrodem, a w tym wpływ diety oraz stresu, zanieczyszczeń środowiska i niektórych patogenów
2
S11 Badania in vitro oraz modele hodowli komórek i tkanek w badaniach fizjologicznej regulacji rozrodu
2
S12 Epidemiologia niepłodności – wpływ czynników jatrogennych i cywilizacyjno-środowiskowych na płodność
2
S13 Specyfika regulacji rozrodu wybranych gatunków zwierząt gospodarskich i domowych
2
S14 Klonowanie zwierząt gospodarskich. Transgeniczne modele zwierzęce w badaniach nad rozrodem ssaków
2
S15 Eksperymenty „in vitro” w badaniach nad regulacją rozrodu 2
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: Ćwiczenia
Łącznie -
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład -
15.2. Seminaria Metody aktywizujące, dyskusja dydaktyczna,
15.3. Ćwiczenia -
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01
Aktywność na zajęciach praktycznych, udział w dyskusji, ocena z kolokwium
-zaangażowanie na ćwiczeniach -10% możliwych do uzyskania w ciągu semestru, dyskusja-max. 20%p możliwych do uzyskania w ciągu semestru, kolokwium 60% (zdany powyżej 45% poprawnych odpowiedzi)
02 Umiejętność wyszukiwania materiałów (internet,
publikacje) dotyczących wybranych zagadnień z
zakresu kontrolowanego rozrodu, ich analizy,
omówienia - przedstawienia w dostępnej formie
kolegom i koleżankom,
- przedstawienie materiału z publikacji naukowych -max. 10%p możliwych do uzyskania w ciągu semestru
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w wykładach -
udział w seminariach 30
udział w ćwiczeniach -
obecność na egzaminie -
konsultacje 15
łącznie 45
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminarium 15
przygotowanie do ćwiczeń -
przygotowanie do kolokwiów 15
przygotowanie do prezentacji publikacji 5
przygotowanie do egzaminu -
łącznie 35
Łącznie 80
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
2
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
-
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1.Rodkiewicz B.: Biologia rozwoju w zarysie PWN Warszawa 1998 2.Krzanowska H, Sokół-Misiak W. Molekularne mechanizmy rozwoju zarodkowego PWN Warszawa 2002 3.Krzymowski T.Biologia rozwoju zwierząt. Fizjologiczna regulacja procesów rozrodczych samicy. Wydawnictwo: Uniwersytetu Warmińsko-Mazurskiego w Olsztynie 2007 4.Strzeżek J. Biologia rozrodu zwierząt. Biologiczne uwarunkowania wartości rozrodowej samca. Wydawnictwo: Uniwersytetu Warmińsko-Mazurskiego w Olsztynie 2007 5.Stokłosowa S.Hodowla komórek i tkanek. PWN 2004
19.2. Uzupełniająca wybrane publikcje dotyczące omawianych zagadnień
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna – 20 osób
20.2. Materiały do zajęć Pokaz multimedialny
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Zakład Biologii Komórki Budynek kampusu B, sala 4.27 (IV piętro) 41-200 Sosnowiec ul.Jedności 8 41-200 Sosnowiec
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Zakład Biologii Komórki Budynek kampusu A, p.303-305 41-200 Sosnowiec ul.Jedności 8 1 godzina raz w tygodniu
Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01
Brak elementarnej wiedzy i na temat podstaw procesów związanych z rozrodem. Znajomość obecnie stosowanych technik w badaniach in vitro nad regulacją rozrodu.
Elementarna wiedza dotycząca podstaw procesów związanych z rozrodem. Znajomość obecnie stosowanych technik w badaniach in vitro nad regulacją rozrodu.
Wiedza na temat podstaw metod procesów związanych z rozrodem. Znajomość obecnie stosowanych technik w badaniach in vitro nad regulacją rozrodu. aktywność na zajęciach. Udział w dyskusji
Ugruntowana i szeroka wiedza na temat procesów związanych z rozrodem. Znajomość obecnie stosowanych technik w badaniach in vitro nad regulacją rozrodu. Wiedza dotycząca najnowszych osiągnięć nauki w tym zakresie. Duża aktywność studenta na zajęciach
Efekt 02
Nie przygotowanie prezentacji lub prezentacja materiału z publikacji bez zrozumienia w odbiorze nie dająca możliwości poszerzenia lub ugruntowania wiedzy przez kolegów
Przygotowanie prezentacji z zakresu materiału znadującego się w publikacji,
Staranne przygotowanie się z zakresu materiału znadującego się w publikacji, wybór informacji, dobrze przygotowany przekaz umiejętne przekaznie istoty publikacji zrozumienie tematu
Bardzo staranne przygotowanie się z zakresu materiału znadującego się w publikacji, wybór najważniejszych informacji, dobrze i ciekawie przygotowany przekaz przygotowanie materiałów pomocniczych do prezentacji umiejętne przekaznie istoty publikacji zrozumienie tematu
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo
dobry”
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: V
6. Nazwa modułu: Moduł biomedyczny Nazwa przedmiotu: Zastosowanie modeli komórkowych i tkankowych w ocenie efektywności oraz bezpieczeństwa kosmetyków i ich składników in vitro
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Zakład Kosmetologii Katedry Kosmetologii, ul. Kasztanowa 3 Sosnowiec 41-200, tel.: 32 269 98 35, [email protected]
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Dr n. med. Magdalena Jurzak, [email protected]
10. Cel kształcenia: Podstawowymi celami kształcenia jest zapoznanie teoretyczne z głównymi mechanizmami działania substancji aktywnych stosowanych w kosmetykach, ich wpływem na metabolizm komórek skóry oraz wywoływanymi efektami kosmetycznymi; zapoznanie z perspektywami poszukiwania i wprowadzenia nowych substancji aktywnych, wytwarzanych biotechnologicznie o potencjalnym zastosowaniu w kosmetykach oraz zapoznanie z perspektywami poszukiwania i wprowadzenia nowych testów alternatywnych oceny bezpieczeństwa kosmetyków (testy oparte o zasadę 3R).
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Znajomość podstawowych mechanizmów procesów molekularnych i biochemicznych komórek oraz zastosowanie substancji pozyskiwanych metodami biotechnolgicznymi w kosmetologii , dermatologii i medycynie estetycznej
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Słuchacz, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 zna substancje czynne kosmetyków, ich mechanizmy działania oraz pochodzenie (naturalne, syntetyczne, tworzone biotechnologicznie)
K2_WO2 K2_WO3 K2_WO4 K2_WO8
M2_WO1 M2_WO2 M2_WO3
02 zna zakresy stosowania, przeciwwskazania i ograniczenia stosowania substancji czynnych kosmetyków/kosmetyków
K2_WO5 K2_WO6 K2_WO7 K2_W15 K2_W17
M2_WO2 M2_WO3 M2_WO5
03 posiada podstawową wiedzę teoretyczną dotyczącą technik, metod i procedur badań laboratoryjnych w zakresie oceny mechanizmów działania, aktywności i efektywności oraz bezpieczeństwa substancji stosowanych aktywnych kosmetyków/kosmetyków
K2_WO8 K2_W11 K2_W15 K2_W17 K2_W18
M2_WO3 M2_WO6 M2_WO7
04 potrafi zaplanować ocenę aktywności wybranych składników czynnych kosmetyków/kosmetyków z zastosowaniem specjalistycznego sprzętu i aparatury laboratoryjnej
K2_WO6 K2_WO7 K2_W17
M2_UO2 M2_UO5 M2_UO8
05 ma świadomość potrzeby uzupełniania wiedzy specjalistycznej przez całe życie i potrafi dobrać właściwe źródła wiedzy i metody uczenia dla siebie i innych
K2_K01
M2_K01 M2_K02
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
03 X
04 X
05 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
W1
14.2. Forma zajęć: Seminaria Liczba godzin
S1 Regulacje prawne w przemyśle kosmetycznym. 1
S2,S3 Szlaki metaboliczne przebiegające w komórkach skóry uczestniczące w tworzeniu bariery Reina. Synteza ceramidów, NMF, białek koperty korneocytów.
2
S4, S5 Szlaki metaboliczne przebiegające w komórkach skóry właściwej wpływające na tworzenie macierzy pozakomórkowej i nawilżenie skóry. Synteza kolagenu, elastyny oraz glikozaminoglikanów i proteoglikanów.
2
S6 Szlaki metaboliczne przebiegające w komórkach skóry. Melanogeneza. 1
S7, S8 Mechanizm działania substancji aktywnych kosmetyków oraz ich potencjalny negatywny wpływ na metabolizm komórek.
2
S9, S10 Przenikanie składników aktywnych kosmetyków przez skórę. 2
S11, S12 Poprawa transportu transepidermalnego z wykorzystaniem metod chemicznych i fizycznych.
2
S 13, S14 Reakcje niepożądane w odpowiedzi na stosowanie kosmetyków. Alergie kontaktowe, podrażnienia skóry, reakcje fitotoksyczne i fotoalergiczne. Przebarwienia skóry.
2
S15, S16 Metody badań surowców i wyrobów kosmetycznych. 2
S17 Zastosowanie testów na zwierzętach oraz testów aplikacyjnych w ocenie negatywnego działania kosmetyków.
1
S18, S19 Metody alternatywne stosowane w testowaniu składników aktywnych kosmetyków.
2
S20, S21 Metody badania skórnej toksyczności ostrej (Dermal Corrosivity Test Methods): CORROSITEX Skin Corrosivity Test, EpiSkin Skin Corrosivity Test, EpiDerm Skin Corrosivity Test, SkinEthic RHE Skin Corrosivity Test, EST-1000 Skin Corrosivity Test
2
S 22 Metody oceny działania drażniącego na skórę związków chemicznych (Dermal Irritation Test Methods): Testy z zastosowaniem ludzkich ekwiwalentów naskórka (EpiSkin, EpiDerm, SkinEthic).
1
S 23 Metody oceny fototoksyczności (Phototoxicity Test Methods): 3T3 NRU phototoxicity test.
1
S24, S25 Metody oceny skórnej immunotoksyczności (Immunotoxicity (Allergic Contact Dermatitis) Test Methods):
2
Murine local lymph node assay (LLNA) for skin sensitization, Nonradioactive LLNA protocol (LLNA: Brd UELISA), Nonradioactive LLNA protocol (LLNA:DA)
S26, S27 Zastosowanie ekwiwalentów EpiSkin, EpiDerm, EpiDermFT i EPISKIN jako modeli naskórka i pełnej grubości skóry w badaniu mechanizmu działania potencjalnych składników aktywnych kosmetyków
2
S28, S29 Badanie wpływu czynników fizycznych i chemicznych na proces melanogenezy oraz ocena potencjału hamującego enzymy melanogenezy z zastosowanie ekwiwalentu naskórka z melanocytami (MelanoDerm).
2
S30 Tkankowy model skóry łuszczycowej. Badania podstawowe i ocena substancji aktywnych w leczeniu łuszczycy oraz pielęgnacji skóry łuszczycowej.
2
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: Ćwiczenia
C1
Łącznie 0
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład
15.2. Seminarium Wykład konwersatoryjny, dyskusja, klasyczna metoda problemowa
15.3. Ćwiczenia praktyczne
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01 Zaliczenie pisemne opisowe obejmujące wszystkie treści programowe z pytaniami otwartymi w tym problemowymi
Uzyskanie powyżej 59% maksymalnej punktacji z zaliczenia pisemnego
02 Zaliczenie pisemne opisowe obejmujące wszystkie treści programowe z pytaniami otwartymi w tym problemowymi
Uzyskanie powyżej 59% maksymalnej punktacji z zaliczenia pisemnego
03 Zaliczenie pisemne opisowe obejmujące wszystkie treści programowe z pytaniami otwartymi w tym problemowymi
Uzyskanie powyżej 59% maksymalnej punktacji z zaliczenia pisemnego
04 Zaliczenie pisemne opisowe obejmujące wszystkie treści programowe z pytaniami otwartymi w tym problemowymi
Uzyskanie powyżej 59% maksymalnej punktacji z zaliczenia pisemnego
05 Zaliczenie pisemne opisowe obejmujące wszystkie treści programowe z pytaniami otwartymi w tym problemowymi
Uzyskanie powyżej 59% maksymalnej punktacji z zaliczenia pisemnego
06 Obserwacja , dyskusja Pozytywna samoocena i opinia uczestników zajęć zweryfikowana przez prowadzącego
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 30
przygotowanie do seminariów 10
obecność na zaliczeniu 5
konsultacje 5
łącznie 50
Samodzielna praca słuchacza
przygotowanie do wykładu konwersatoryjnego i dyskusji 30
przygotowanie do seminariów
przygotowanie teoretyczne z treści realizowanych podczas ćwiczeń praktycznych
10
przygotowanie do egzaminu pisemnego z przedmiotu 5
łącznie 45
Łącznie 95
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą słuchacz uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
2
Liczba punktów ECTS, którą słuchacz uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Stokłosowa S.: Hodowla komórek i tkanek. PWN, Warszawa 2004. 2. Słomski R. Analiza DNA teoria i praktyka. Wydawnictwo Uniwersytety Medycznego w Poznaniu.
Poznań, 2008.
19.2. Uzupełniająca 1. Guelcher S. A., Hollinger J.O. The Biomedical Engineering Series. An Introduction to Biomaterials.
Taylor &. Francis. 2006 2. Scheper T. Advances in Biochemical Engineering / Biotechnology. Tissue Engineering I. Scaffold
Systems for Tissue Engineering. Springer-Verlag Berlin Heidelberg 2006. 3. Scheper T. Advances in Biochemical Engineering / Biotechnology. Tissue Engineering II. Basics of
Tissue Engineering and Tissue Applications. Springer-Verlag Berlin Heidelberg 2006. 4. Hench Larry L., Jones Julian R.: Biomaterials, artificial organs and tissue engineering. Woodhead
Publishing Limited. England 2005. 5. IkadaY. Tissue Engineering. Fundamentals and Applications.
Interface Science and Technology . Vol.8 Suzuka University of Medical Science. Suzuka Japan 2006.
6. Park Joon B., Bronzino Joseph D. Biomaterials. Principles and Applications. CRC Press, Boca Raton, FL, 2000.
7. Vunjak – Novakovic Gordana, Freshney R. I. Culture of cells for tissue engineering. John Wiley & Sons, Inc., 2006.
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna – 20 osób
20.2. Materiały do zajęć
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
Pracownia kosmetyczna oraz Pracownia hodowli komórkowych Zakład Kosmetologii Katedry Kosmetologii ul. Kasztanowa 3 41-200 Sosnowiec
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Zakład Kosmetologii Katedry Kosmetologii ul. Kasztanowa 3 41-200 Sosnowiec
20.5. Inne
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01 poniżej 60% maksymalnej punktacji
60% - 76% maksymalnej punktacji
77% - 84% maksymalnej punktacji)
85% - 100% maksymalnej punktacji
Efekt 02 poniżej 60% maksymalnej punktacji
60% - 76% maksymalnej punktacji
77% - 84% maksymalnej punktacji)
85% - 100% maksymalnej punktacji
Efekt 03 poniżej 60% maksymalnej punktacji
60% - 76% maksymalnej punktacji
77% - 84% maksymalnej punktacji)
85% - 100% maksymalnej punktacji
Efekt 04 poniżej 60% maksymalnej punktacji
60% - 76% maksymalnej punktacji
77% - 84% maksymalnej punktacji)
85% - 100% maksymalnej punktacji
Efekt 05 poniżej 60% maksymalnej punktacji
60% - 76% maksymalnej punktacji
77% - 84% maksymalnej punktacji)
85% - 100% maksymalnej punktacji
Efekt 06 świadomie nie przestrzega podstawowych norm etycznych
przestrzega podstawowe normy etyczne
przestrzega nie tylko podstawowe normy etyczne, jak również informuje o możliwościach podjęcia innych strategii
przestrzega nie tylko podstawowe normy etyczne, jak również informuje o możliwościach podjęcia innych strategii informując o możliwych konsekwencjach
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo dobry”
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: V
6. Nazwa modułu: Biomedyczny Nazwa przedmiotu: BIOKOSMECEUTYKI I BIOFARMACEUTYKI
7. Status przedmiotu: do wyboru
8. Jednostka realizująca przedmiot: Zakład Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej
9. Prowadzący przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Dr hab. n. med. Ilona Bednarek, [email protected]
10. Cel kształcenia: Celem przedmiotu jest zapoznanie teoretyczne z możliwościami oraz metodami biotechnologicznego pozyskiwania składników czynnych (pochodzących z całych organizmów, jak i produktów ich metabolizmu) wykorzystywanych w biotechnologii, kosmetologii, farmacji i medycynie. Zapoznanie z zasadami bioprodukcji substancji czynnych.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Student powinien posiadać zaliczenie z kursów: mikrobiologia, biochemia, inżynieria genetyczna i biotechnologia leków.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Wymienia i charakteryzuje procesy biotechnologiczne prowadzące do otrzymania surowców wykorzystywanych w biotechnologii, kosmetologii, farmacji i medycynie.
K1_W04 K1_W05 K1_W06 K1_W18 K1_W25 K1_W34 K1_W35 K1_W43 K1_W44 K1_U06 K1_U37
M1_W01 M1_W03 M1_W05 M1_W10 M1_U01 M1_U10
02 Rozróżnia bioprocesy i procesy syntezy chemicznej, wskazuje ich etapy, zastosowanie oraz wady i zalety.
K1_W06 K1_W07 K1_W08 K1_W18 K1_W25 K1_W34 K1_W35 K1_W36 K1_W37 K1_W42 K1_W43 K1_U32 K1_U41
M1_W01 M1_W03 M1_W05 M1_W10 M1_U09 M1_U10
03 Charakteryzuje właściwości składników aktywnych wykorzystywanych w biotechnologii, kosmetologii, farmacji i medycynie.
K1_W01 K1_W03 K1_W18 K1_U09
M1_W01 M1_W03 M1_U01
04 Znajduje zastosowanie składników aktywnych pochodzenia biotechnologicznego w preparatach medycznych, farmaceutycznych i kosmetycznych.
K1_W01 K1_W18 K1_W43
M1_W01 M1_W03
05 Opisuje metody wykorzystywane do oceny czystości i aktywności substancji pochodzenia mikrobiologicznego.
K1_W08 K1_W09 K1_W10
M1_W01
06 Korzysta z dostępnych źródeł informacji i interpretuje dane zawarte w publikacjach naukowych. Samodzielnie przygotowuje i przedstawia prezentację na podstawie wyszukanych danych.
K1_W24 K1_W45 K1_U21 K1_U22 K1_U44 K1_U45 K1_U46 K1_U47 K1_U49 K1_K01 K1_K13 K1_K15 K1_K16
M1_W04 M1_U06 M1_U12 M1_U13 M1_U14 M1_K01 M1_K07 M1_K08
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 x
02 x
03 x
04 x
05 x
06 x
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
łącznie 0
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1
Podstawy bioprocesów służących do produkcji surowców czynnych wykorzystywanych w biotechnologii, kosmetologii, farmacji i medycynie. Wprowadzenie do mikrobiologii przemysłowej. Porównanie klasycznych metod syntezy chemicznej z technologią bioprocesową.
3
S2
Przykłady surowców kosmetycznych wytwarzanych biotechnologicznie. Technologie prowadzące do otrzymywania wybranych bioproduktów: kwasów organicznych, polisacharydów, aminokwasów, związków peptydowych, enzymów i czynników wzrostowych dla komórek.
6
S3
Przykłady surowców otrzymywanych biotechnologicznie wykorzystywanych w farmacji i medycynie. Technologie prowadzące do otrzymywania wybranych bioproduktów: preparaty krwiozastępcze, biomateriały, białka rekombinantowe.
6
S4 Komórki macierzyste i ich produkty. 3
S5 Związki o działaniu napinającym, natłuszczającym i zwiększającym uwodnienie otrzymywane metodami biotechnologicznymi.
3
S6
Wprowadzenie do nanaobiotechnologii. Zapoznanie z nano- i mikrostrukturami stosowanymi w kosmetykach i farmaceutykach (nanosfery, mikrosfery). Zapoznanie z technikami używanymi do wytwarzania nanostruktur stosowanych w kosmetologii i medycynie.
3
S7
Mikrobiologiczne zanieczyszczenia surowców oraz produktów kosmetycznych i farmaceutycznych w świetle prowadzenie bioprocesu. Kryteria czystości mikrobiologicznej kosmetyków i farmaceutyków oraz konsekwencje ich skażenia mikrobiologicznego.
3
S8 Produkty medyczne, farmaceutyczne i kosmetyczne zawierające surowce otrzymywane biotechnologicznie.
3
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: ćwiczenia
łącznie 0
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład -
15.2 Seminarium Prelekcja, pokaz, dyskusja problemowa, analiza problemowa, prezentacja multimedialna
15.3 Ćwiczenia -
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01-05 Kolokwium zaliczeniowe weryfikujące wiedzę teoretyczną
Uzyskanie co najmniej 60% poprawnych odpowiedzi z kolokwium.
06 Przygotowanie prezentacji multimedialnej na wskazany temat
Przedstawienie prezentacji i aktywny udział w dyskusji.
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 30
udział w konsultacjach 15
łącznie 45
Samodzielna praca studenta:
przygotowanie prezentacji multimedialnej i wystąpienia ustnego
10
przygotowanie do kolokwium zaliczeniowego 20
łącznie 30
Łącznie 75
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
2
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
1
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Koslowski A. Biotechnology in Cosmetics: Concepts, Tools and Techniques. Allured Publishing
Corporation 2007.
2. Bednarski W, Fiedurek J (red.). Podstawy biotechnologii przemysłowej. Wydawnictwa Naukowo-Techniczne, Warszawa 2007.
3. Ratledge C, Kristiansen B (red.). Podstawy biotechnologii. PWN, Warszawa 2011 4. Chmiel A. Biotechnologia. Podstawy mikrobiologiczne i biochemiczne. PWN, Warszawa 1998. 5. Red. Bednarek I. Podstawowe zagadnienia z obszaru biotechnologii farmaceutycznej. SUM Katowice
2007.
19.2. Uzupełniająca
1. Wybrane publikacje z prasy branżowej. 20. Inne przydatne informacje o przedmiocie
20.1. Liczebność grup Ustalana zarządzeniami J.M. Rektora
20.2. Materiały do zajęć Wybrane materiały w formie elektronicznej umieszczane są na stronie internetowej Zakładu.
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Ustalane przez Dziekanat lub sala ćwiczeń Zakładu Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Zakład Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej SUM. Ustalane indywidualnie z prowadzącymi zajęcia
20.5. Inne Bieżące ogłoszenia na stronie Zakładu: http://biotechnologia.sum.edu.pl (zakładka: studenci)
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01 Student nie potrafi
wymienić
i scharakteryzować
podstawowych
procesów
biotechnologicznych
prowadzących do
otrzymania
surowców
wykorzystywanych
w biotechnologii,
kosmetologii,
farmacji i medycynie
lub/i
Student nie jest
obecny na
wszystkich
godzinach
seminaryjnych.
Student potrafi
wymienić procesy
biotechnologiczne
prowadzące do
otrzymania
surowców
wykorzystywanych
w biotechnologii,
kosmetologii,
farmacji
i medycynie.
Student potrafi
wymienić
i scharakteryzować
procesy
biotechnologiczne
prowadzące do
otrzymania
surowców
wykorzystywanych
w biotechnologii,
kosmetologii,
farmacji
i medycynie.
Student bezbłędnie
wymienia
i dokładnie
charakteryzuje
procesy
biotechnologiczne
prowadzące do
otrzymania
surowców
wykorzystywanych
w biotechnologii,
kosmetologii,
farmacji
i medycynie.
Efekt 02 Student nie
rozróżnia
bioprocesów
i procesów syntezy
chemicznej, nie
potrafi wskazać ich
Student potrafi
rozróżnić bioprocesy
i procesy syntezy
chemicznej. Potrafi
wymienić przykłady
zastosowania oraz
Student potrafi
wyjaśnić różnice
pomiędzy
bioprocesami
a procesami syntezy
chemicznej. Potrafi
Student doskonale
wskazuje
i charakteryzuje
wszystkie różnice
pomiędzy
bioprocesami
etapów
i zastosowań,
wad i zalet
lub/i
Student nie jest
obecny na
wszystkich
godzinach
seminaryjnych.
kilka wad i zalet
bioprocesów
i procesów syntezy
chemicznej.
wymienić wszystkie
wady i zalety
bioprocesów
w porównaniu
z klasyczną
technologią syntezy
chemicznej.
a procesami syntezy
chemicznej. Rozumie
i wyjaśnia ciąg
przyczynowo –
skutkowy ich wad
i zalet.
Efekt 03 Student nie potrafi
scharakteryzować
właściwości
składników
aktywnych
wykorzystywanych
w biotechnologii,
kosmetologii,
farmacji i medycynie
lub/i
Student nie jest
obecny na
wszystkich
godzinach
seminaryjnych.
Student potrafi
krótko
scharakteryzować
niektóre właściwości
składników
aktywnych
wykorzystywanych
w biotechnologii,
kosmetologii,
farmacji
i medycynie.
Student potrafi
scharakteryzować
wszystkie
właściwości
składników
aktywnych
wykorzystywanych
w biotechnologii,
kosmetologii,
farmacji
i medycynie.
Student potrafi
szczegółowo
scharakteryzować
i omówić wszystkie
właściwości
składników
aktywnych
wykorzystywanych
w biotechnologii,
kosmetologii,
farmacji
i medycynie.
Efekt 04 Student nie zna
zastosowania
składników
aktywnych
pochodzenia
biotechnologicznego
w preparatach
medycznych,
farmaceutycznych
i kosmetycznych
lub/i
Student nie jest
obecny na
wszystkich
godzinach
seminaryjnych.
Student posiada
ogólną wiedzę na
temat zastosowania
składników
aktywnych
pochodzenia
biotechnologicznego
w preparatach
medycznych,
farmaceutycznych
i kosmetycznych.
Student dobrze
wskazuje i opisuje
przykłady
zastosowania
składników
aktywnych
pochodzenia
biotechnologicznego
w preparatach
medycznych,
farmaceutycznych
i kosmetycznych.
Student potrafi
doskonale
wskazywać
i charakteryzować
zastosowanie
składników
aktywnych
pochodzenia
biotechnologicznego
w preparatach
medycznych,
farmaceutycznych
i kosmetycznych.
Efekt 05 Student nie zna
metod oceny
czystości
i aktywności
substancji
pochodzenia
Student potrafi
wymienić metody
wykorzystywane do
oceny czystości
i aktywności
substancji
Student potrafi
wymienić metody
wykorzystywane do
oceny czystości
i aktywności
substancji
Student bezbłędnie
wskazuje i
charakteryzuje
metody pozwalające
na ocenę czystości
i aktywności
mikrobiologicznego
lub/i
Student nie jest
obecny na
wszystkich
godzinach
seminaryjnych.
pochodzenia
mikrobiologicznego.
pochodzenia
mikrobiologicznego.
substancji
pochodzenia
mikrobiologicznego.
Efekt 06 Student nie potrafi
korzystać z
dostępnych źródeł
informacji oraz
interpretować
danych zawartych
w publikacjach
naukowych. Nie
przygotowuje
prezentacji lub
przygotowuje
prezentację bez
zrozumienia tematu
lub nie na temat. Nie
bierze udziału
w dyskusji, nie
potrafi
odpowiedzieć na
zadawane mu
pytania
lub/i
Student nie jest
obecny na
wszystkich
godzinach
seminaryjnych.
Student korzysta
z dostępnych źródeł
informacji
i interpretuje dane
zawarte
w publikacjach
naukowych.
Poprawnie
przygotowuje
prezentację na
zadany temat. Bierze
udział w dyskusji.
Student z łatwością
korzysta
z dostępnych źródeł
informacji,
bezbłędnie
interpretuje dane
zawarte
w publikacjach
naukowych.
Starannie
przygotowuje
prezentacje
wybierając
najistotniejsze
informacje
świadczące
o zrozumieniu
tematu. Umiejętnie
przekazuje wiedzę
słuchaczom. Bierze
aktywny udział
w dyskusji.
Student
samodzielnie
wyszukuje i świetnie
interpretuje
informacje
i publikacje naukowe
na zadany temat.
Starannie
przygotowuje
prezentacje
wybierając
najistotniejsze
informacje
świadczące
o zrozumieniu
tematu. Umiejętnie
przekazuje wiedzę
słuchaczom. Bierze
aktywny udział w
dyskusji. Potrafi
odpowiedzieć na
zadawane mu
pytania.
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo
dobry”
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: studia stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: V
6. Nazwa modułu: Moduł molekularno-biochemiczny Nazwa przedmiotu: Mikromacierze w diagnostyce genetycznej
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot:
Katedra i Zakład Biologii Molekularnej, ul. Jedności 8, 41-206 Sosnowiec, tel. (0-32) 364-10-20, e-mail: [email protected], http://www.biolmol.sum.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail):
Prof. dr hab. n. med. Urszula Mazurek, [email protected]
10. Cel kształcenia: Zapoznanie studentów z techniką mikromacierzy w analizie genomu, transkryptomu i proteomu. Opanowanie umiejętności korzystania z biomedycznych baz danych i przerowadzania analizy danych uzyskiwanych techniką mikromacierzy z wykorzystaniem narzędzi bioinformatycznych oraz opanowanie umiejętności interpretacji otrzymanych wyników.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Wiedza z zakresu: biologii molekularnej z elementami diagnostyki molekularnej oraz biochemii. Umiejętności: planowanie i przeprowadzanie badań technikami biologii molekularnej. Inne kompetencje: Potrafi rozwiązywać najczęstsze problemy związane z wykonywaniem pracy zawodowej.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Zna budowę i funkcje biologiczne kwasów nukleinowych i białek. Zna główne szlaki metaboliczne, powiązania oraz mechanizmy utrzymania homeostazy
K1_W03 K1_W13
M1_W01 M1_W02
02 Wykazuje znajomość metod ekstrakcji kwasów nukleinowych i białek oraz metod oceny jakościowej i ilościowej ekstraktów oraz metod wyznaczania genomów, transkryptomów i proteomów. Potrafi wykorzystać mikromacierze do poszukiwania nowych substancji leczniczych. Ma wiedzę na temat błędów w wykonywaniu prowadzonych badań.
K1_W08 K1_W19 K1_W25 K1_U11
M1_W01 M1_W03 M1_W05 M1_U02
03 Zna zasady pracy techniką mikromacierzy oligonukleotydowych oraz podstawowe metody badania, genomów, transkryptomów i potrafi posługiwać się podstawowymi metodami biologii molekularnej Potrafi poprawnie interpretować otrzymane wyniki i przeprowadzić ich walidację. Potrafi zabezpieczyć materiał biologiczny do analizy transkryptomu i rozpoznać zjawisko kontaminacji
K1_W16 K1_W19 K1_U10 K1_U11 K1_U25
M1_W03 M1_W03 M1_U01 M1_U02 M1_U07
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
03 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
Łącznie
14.2. Forma zajęć: …
S1 Zastosowanie mikromacierzy DNA w genomice strukturalnej i funkcjonalnej : Mikromacierze w diagnostyce i w terapii
2
S2 Mikromacierze dna – nowe narzędzie w wykrywaniu ksenobiotyków aktywnych biologicznie
4
S3 Zastosowanie mikromacierzy DNA w genomice strukturalnej i funkcjonalnej. Mikromacierze statyczne i mikromacierze przepływowe
4
S4 Mikromacierze wykrywające miejsca łączenia eksonów Macierze reprezentujące eksony (ang. exon arrays)
4
S5 Mikromacierze równomiernie pokrywające genom, zwane mikromacierzami dachówkowymi
4
S6 Zalety mikromacierzy CGH w porównaniu z klasyczną hybrydyzacją do chromosomów. Porównawcza hybrydyzacja genomowa – CGH
4
S7 Typy mikromacierzy białkowych: mikromacierze przeciwciał, mikromacierze antygenowe i mikromacierze GPC
4
S8
Typy nośników stałych dla mikromacierzy. TMA – ang. tissue microarrays – mikromacierze tkankowe. Bioinformatyka w analizie wyników otrzymywanych techniką mikromacierzy.
4
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: Ćwiczenia laboratoryjne i praktyczne
Łącznie
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład
15.2. Seminaria symulacje, metody przypadków, metody sytuacyjne, dyskusje dydaktyczne
15.3. Ćwiczenia
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 Zadania otwarte Test zaliczeniowy
02 Zadania otwarte Test zaliczeniowy
03 Projektowanie badań techniką mikromacierzy w zależności od postawionego problemu
Akceptacja projektu
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 15x2=30
udział w konsultacjach 10
Udział w teście zaliczeniowym 2
Łącznie 42
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminariów 20h
Przygotowanie do testu zaliczeniowego 10h
Łącznie 30
Łącznie 72
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
3
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
19. Literatura
19.1. Podstawowa
1. T.A. Brown: Genomy, PWN, Warszawa 2009
2. R.Kordek, AK. Bednarek: Mikromacierze DNA w badaniach raka piersi; Onkologia w Praktyce
Klinicznej, tom 1, nr 1, 10-17.
3. M. Karczmarczyk, M. Bartoszcze: Mikromacierze DNA – nowe narzędzie w wykrywaniu czynników
biologicznych, Przegląd Epidemiol. 2006; 60: 803-811.
4. Affymetrix: GeneChip Expression Analysis Technical Manual
5. Affymetrix: Microarray Suite 5.1 User’s Guide
6. AD.Baxevanis, BFF Ouellette: Bioinformatyka. Podręcznik do analizy genów i białek, PWN, Warszawa
2004
7. PG Higgs, TK Attwood. Bioinformatyka i ewolucja molekularna PWN, Warszawa 2008
19.2. Uzupełniająca
1.Richard J. Epstein Biologia molekularna człowieka. Wydawnictwo Czelej 2006 2. JM Berg, JL Ttymoczko, Lubert Stryer Biochemia. Wydawnictwo Naukowe PWN Warszawa 2009 3. J. Bal Biologia molekularna w medycynie Wydawnictwo Naukowe PWN Warszawa 2008
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna maksymalnie 20 osób
20.2. Materiały do zajęć zagadnienia do przygotowania na seminaria, publikacje z czasopism naukowych, podręczniki
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
Sosnowiec, ul. Jedności 8
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Sosnowiec, ul. Jedności 8, zgodnie z harmonogramem dostępnym na stronie Katedry i Zakładu Biologii Molekularnej Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01 Efekt 02
poniżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
poniżej 80% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
poniżej 90% poprawnych odpowiedzi w teście
Efekt 03
Potrafi wyznaczyć profil aktywności transkrypcyjnej wybranych genów. Potrafi posługiwać się naukowymi bazami internetowymi potrafi wyszukać
potrzebne informacje, znaleźć konserwowaną lub zmienną sekwencje
nukleotydową i zaprojektować startery do analizy modyfikacji
potranskrypcyjnej
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo
dobrą
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: V
6. Nazwa modułu: Moduł molekularno – biochemiczny Nazwa przedmiotu: Techniki hybrydyzacji w diagnostyce molekularnej
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Biologii Molekularnej, ul. Jedności 8, 41-206 Sosnowiec, tel. (0-32) 364-10-20, e-mail: [email protected], http://www.biolmol.sum.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail):
Prof. Urszula Mazurek [email protected] 10. Cel kształcenia: Opanowanie przez studenta wiedzy i umiejętności w zakresie podstawowych zasad planowania i przeprowadzania badań diagnostycznych technikami hybrydyzacji kwasów nukleinowych
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Wiedza z zakresu: biologii molekularnej z elementami diagnostyki molekularnej oraz biochemii. Umiejętności: planowanie i przeprowadzanie badań technikami biologii molekularnej. Inne kompetencje: Potrafi rozwiązywać najczęstsze problemy związane z wykonywaniem pracy zawodowej.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Definiuje i opisuje metody badań stosowane w diagnostyce molekularnej. Zna uwarunkowania prawne i etyczne w pracy z materiałem biologicznym
K1_W16 K1_W30 K1_W31
M1_W03 M1_W08 M1_W08
02 Planuje proces diagnostyczny z wykorzystaniem technik biologii molekularnej; dobiera metody badań molekularnych stosownie do problemu diagnostycznego, wskazuje metody weryfikacji wyników w przebiegu analizy molekularnej
K1_W18 K1_W19 K1_U40 K1_K12
M1_W03 M1_W03 M1_U10 M1_K06
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne Inne e-learning
01 X
02 x
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
W1
Łącznie godzin 0
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1 Hybrydyzacja w metodach detekcji DNA i RNA we współczesnej diagnostyce medycznej Hybrydyzacja kanapkowa – hybrydyzacja w wyniku konkurencji między sondami
2
S2 Preparatyka sond hybrydyzacyjnych Metody enzymatyczne wprowadzania znaczników do cząsteczek kwasów nukleinowych
4
S3 Hybrydyzacja in situ IS i FISH 4
S4 Hybrydyzacja do chromosomu in situ –porównawcza hybrydyzacja genomowa (CGH)
4
S5 Hybrydyzacja do pojedynczej komórki bakterii 4
S6 Hybrydyzacja do tkanki in situ 4
S7 Genomowa hybrydyzacja jako narzędzie taksonomiczne 4
S8 Hybrydyzacja w technologiach miniaturyzacji - mikromacierze 4
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: ćwiczenia …
Łącznie 0
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1.seminaria wykłady informacyjne, konwersatoria, dyskusje problemowe, metody przypadków
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 Zadania zamknięte Test zaliczeniowy
02 Zadania otwarte Test zaliczeniowy
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 15x2=30
obecność na teście zaliczeniowym 2
Konsultacje 10
łącznie 42
Samodzielna praca studenta
Przygotowanie do zajęć 18
Przygotowanie do testu zaliczeniowego 10
łącznie 28
Łącznie 70
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
3
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Słomski R. (red.): Przykłady analiz DNA. Wydawnictwo Akademii Rolniczej, Poznań 2004 2. Słomski R. (red.): Analiza DNA teoria i praktyka. Wydawnictwo Uniwersytetu Przyrodniczego, Poznań 2008 3. Bal J. (red): Biologia molekularna w medycynie, elementy genetyki klinicznej. PWN, Warszawa 2006
19.2. Uzupełniająca 1. Pierzchalski P, Zazula M, Stój A, Wójcik P, Sińczak-Kuta A, Klimkowska A. Czy onkologiczna diagnostyka
molekularna jest potrzebna? Kardiochirurgia i Torakochirurgia Polska 2009; 6 (1): 65-67
2. Bartkowiak J. Badania molekularne w rozpoznawaniu i różnicowaniu chorób zakaźnych. Przegl
Epidemiol 2003;57:381-9
3. Kozak-Cięszczyk M. Diagnostyka molekularna w parazytologii. KOSMOS 2005; 54 (1):49–60
4. Dmitrzak-Węglarz M, Hauser J. Wykorzystanie badań proteomicznych w poszukiwaniu markerów
biologicznych dla chorób psychicznych. Psychiatria 2006; 3 (3):118–127
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna maksymalnie 20 osób
20.2. Materiały do zajęć zagadnienia do przygotowania na seminaria, podręczniki, piśmiennictwo źródłowe
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
Sosnowiec, ul. Jedności 8
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Sosnowiec, ul. Jedności 8, zgodnie z harmonogramem umieszczonym na stronie internetowej Katedry Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne
1. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01 Efekt 02
poniżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 80% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
powyżej 90% poprawnych odpowiedzi w teście zaliczeniowym
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: V
6. Nazwa modułu: molekularno-biochemiczny Nazwa przedmiotu: Modelowanie struktury przestrzennej cząsteczek związków chemicznych i dużych
biocząsteczek 7. Status modułu/przedmiotu: do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Zakład Chemii Ogólnej i Nieorganicznej Katedra Chemii Ogólnej i Analitycznej
9. Prowadzący moduł/przedmiot: dr hab. Wojciech Baran e-mail: [email protected]
10. Cel kształcenia: Wykorzystanie modelowania molekularnego jako wsparcia badań eksperymentalnych
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Posiadanie wiedzy teoretycznej z zakresu chemii ogólnej, nieorganicznej, organicznej oraz biologii
12. Efekty kształcenia
Numer efektu kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01
potrafi rysować strukturę związków chemicznych w wymiarze 2D, tworzyć jej trójwymiarową strukturę przestrzenną oraz przeprowadzić jej energetyczną minimalizację
K1_W03 K1_U31 K1_U45 K1_K06 K1_K07
M1_W01 M1_U08 M1_U12 M1_K04 M1_K04
02
potrafi uzyskać z internetowych baz danych strukturę dużej biocząsteczki na podstawie jej nazwy lub identyfikatora struktury, zaprezentować różne formy graficzne jej struktury
K1_W24 K1_W45 K1_U09
M1_W04 - M1_U01
03
potrafi wyznaczyć niektóre właściwości cząsteczki (np. długości wiązań, kąty między wiązaniami, potencjały cząsteczkowe), określić oddziaływania między atomami (np. wiązania wodorowe) wewnątrzcząsteczkowe i między cząsteczkami
K1_W24, K1_W45 K1_U23 K1_U31 K1_U45
M1_W04 - M1_U06 M1_U08 M1_U12
04
posiada znajomość obsługi komputera w zakresie przygotowania prezentacji, gromadzenia danych i podstaw grafiki komputerowej
K1_U23 K1_U21 K1_W09
M1_U06 M1_U06 M1_W01
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 x
02 x
03 x
04 x
05 x
06 x
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Ćwiczenia praktyczne
C1
Omówienie i prezentacja programów komputerowych do tworzenia
struktury cząsteczki (struktury 2D i 3D); internetowe bazy (on-line)
chemicznych struktur związków chemicznych w tym leków i ich właściwości
fizykochemicznych; internetowe bazy (on-line) krystalicznych struktur
biocząsteczek (białka, DNA) (nauczyciel)
5
C2
Omówienie i prezentacja programów komputerowych do badania
oddziaływania pomiędzy związkiem chemicznym i biocząsteczką
(nauczyciel) 5
C3 Pozyskiwanie programów udostępnianych w ramach licencji open source
zdolnych do przetwarzania danych w formacie PDB (nauczyciel) 5
C4
Przeprowadzenie procesu dokowania. Ocena otrzymanych kompleksów
pod względem oddziaływań międzycząsteczkowych pomiędzy lekiem i
biocząsteczką (nauczyciel)
5
C5
Samodzielne wykonanie przez studenta ćwiczenia, na podstawie
omówionych wcześniej tematów i poleceń przygotowanych przez
nauczyciela w postaci krótkiej instrukcji
5
C6
Kontynuacja ćwiczenia 5, przygotowanie prezentacji z uzyskanych wyników
w programie PowerPoint (możliwe korzystanie przez studentów z własnych
komputerów przenośnych)
5
Łącznie 30
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Ćwiczenia praktyczne
Prezentacja dostępnych dla studenta programów komputerowych i ich obsługi, na poziomie koniecznym do zrealizowania tematu ćwiczenia; komputery z dostępem do internetu
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01 Narysowanie struktury chemicznej cząsteczki w
wymiarze 2D i 3D; uzyskanie struktury chemicznej
związku i leku za pomocą wybranej internetowej bazy
danych.
Uzyskanie minimum 60 % poprawnej odpowiedzi, odpowiedź w formie pliku komputerowego
02 Uzyskanie zadanej struktury biocząsteczki z wybranej
internetowej bazy danych
Uzyskanie minimum 60 % poprawnej odpowiedzi, odpowiedź w formie pliku komputerowego
03 Omówienie budowy kompleksu lek-bioczasteczka uzyskanego z wybranej bazy internetowej i uzyskanego podczas ćwiczeń praktycznych
Uzyskanie minimum 60 % poprawnej odpowiedzi, odpowiedź w formie pliku komputerowego
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
udział w ćwiczeniach praktycznych 6 x 5h=30h
udział w konsultacjach 5 x 2h=10h
łącznie 40 przygotowanie do ćwiczeń 5 x 2h=10
przygotowanie sprawozdań 5 x 4h=20
łącznie 30
Łącznie 70
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
1,74
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
1,2
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. D. Steinhilber, M. Schubert-Zsilavecz, H.J. Roth. Chemia medyczna. Warszawa: MedPharmPolska; 2013: 1-
25. 2. S. Polak, B. Wiśniowska Modelowanie komputerowe w badaniach nad lekiem - projektowanie i
poszukiwanie cząsteczki aktywnej, ocena właściwości fizykochemicznych oraz aktywności biologicznej. Farm. Pol. 2009; 65 (3) 214-223.
3. B. Wiśniowska, S. Polak Modelowanie komputerowe w badaniach nad lekiem - przewidywanie potencjalnych działań toksycznych. Farm. Pol. 2009: 65 (6), 445-452.
4. L.P. Graham. Chemia medyczna. Warszawa: Wydawnictwo Naukowo-Techniczne PWN, 2003: 179-231
19.2. Uzupełniająca
1. A. Bielański. Podstawy chemii nieorganicznej. Tom I, II. Wydanie szóste, uaktualnione, Wydawnictwo
Naukowe PWN, 2013 (copyright 2008) 2. J. D. Lee. Zwięzła chemia nieorganiczna. Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 1997 3. P.A. Cox. Chemia nieorganiczna. Krótkie wykłady, Wydawnictwo Naukowe PWN Warszawa, 2003 4. L. Jones, P. W. Atkins. Chemia ogólna. Cząsteczki, materia, reakcje. Tom 1. PWN Warszawa 2009, 5. T. Kędryna. Chemia ogólna z elementami biochemii. Wydawnictwo ZamKor, Kraków 2004
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup 10 - 20
20.2. Materiały do zajęć sprzęt komputerowy ze standardowym oprogramowaniem oraz wskazówki do ćwiczeń w formie instrukcji
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Sala seminaryjna wyposażona w sprzęt audio-wideo z dostępem do internetu
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Zgodnie z harmonogramem 2 godz zegarowe 1 raz w tygodniu
20.5. Inne Koło STN indywidualna praca z nauczycielem akademickim, udział w profesjonalnych badaniach naukowych prezentacja wyników tych badań na studenckich zjazdach naukowych
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01 Otrzymuje student, który nie przyswoił podstawowe umiejętności, nie potrafi nawet z pomocą prowadzącego zajęcia rozwiązać najprostszych zadań
Otrzymuje student, który przyswoił podstawowe umiejętności, potrafi z pomocą prowadzącego zajęcia rozwiązać proste zadania
Otrzymuje student, który przyswoił wiedzę i umiejętności w stopniu dobrym, potrafi samodzielnie rozwiązać większość stawianych problemów
Otrzymuje student, który przyswoił pełny zakres wiedzy i umiejętności, potrafi samodzielnie rozwiązać złożone zadania i problemy
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: V
6. Nazwa modułu: Moduł biotechnologiczny Nazwa przedmiotu: Mikrobiologia sanitarna
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Mikrobiologii i Wirusologii 41-200 Sosnowiec, ul. Jagiellońska 4
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Dr hab. n. med. Tomasz Wąsik, prof. nadzw. SUM; [email protected]
10. Cel kształcenia: Zdobycie przez studentów wiedzy z zakresu źródeł i zagrożeń spowodowanych przez zanieczyszczenie mikrobiologiczne powietrza, wody, gleby, żywności i środków farmaceutycznych, ich eliminacji, wymagań dytyczących higieny warunków produkcji oraz badania mikrobiologicznego próbek z otaczającego środowiska i produkcji przemysłowej.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: znajomość mikrobiologii ogólnej
12. Efekty kształcenia
Numer efektu kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Zna zasady prowadzenia diagnostyki mikrobiologicznej pod kątem analizy sanitarnej otoczenia i próbek środowiskowych
K1_W19 M1_W03
02 Zna zagrożenia i konsekwencje zdrowotne związane z mikrobiologicznym zanieczyszczeniem środowiska
K1_W20 M1_W04
03 Zna zasady pracy w laboratorium mikrobiologicznym pod kątem analizy sanitarnej otoczenia i próbek środowiskowych
K1_W32 M1_W09
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 x
02 x
03 x
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Seminaria Liczba godzin
S1
Mikrobiologiczne badanie powietrza i powierzchni płaskich. Analiza bakteriologiczna powietrza do celów sanitarnych. Badanie mikrobiologiczne powietrza metodą sedymentacyjną. Kontrola skażenia bakteriologicznego powierzchni płaskich metodą wymazów.
6
S2 Analiza sanitarna wody. Badanie bakteriologiczne wody dla celów sanitarnych. Wskaźniki zanieczyszczenia bakteriologicznego wody: indeks/miano.
6
S3 Analiza sanitarna gleby. Źródła zanieczyszczenia mikrobiologicznego gleby. Badanie bakteriologiczne gleby dla celów sanitarnych.
6
S4
Mikrobiologiczna czystość produktów farmaceutycznych. Badanie jałowości i czystości mikrobiologicznej preparatów farmaceutycznych wg Farmakopei. Podział leków pod względem wymagań mikrobiologicznych. Pobieranie i przygotowanie prób do badań. Badania jakościowe i ilościowe preparatów farmaceutycznych. Badanie mikrobiologiczne wody używanej do celów farmaceutycznych.
6
S5 Mikrobiologiczna analiza żywności. Techniki pobierania próbek żywności do badań mikrobiologicznych, ich transport i przechowywanie. Jakościowe i ilościowe badanie mikrobiologiczne próbek żywności.
6
Łącznie 30
15. Metody kształcenia
15.1. Seminarium
Metoda podająca: prelekcja / Metoda problemowa: dyskusja dydaktyczna
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01 Kolokwium pisemne (zadania otwarte) Minimum 60%
02 Kolokwium pisemne (zadania otwarte) Minimum 60%
03 Kolokwium pisemne (zadania otwarte), ocena studenta na ćwiczeniach i egzamin ustny
Minimum 60%
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 30
konsultacje 5
Udział w zaliczeniu 3
łącznie 38
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminariów 20
przygotowanie do kolokwium 15
łącznie 35
Łącznie 73
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
2
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym 1
19. Literatura
19.1. Podstawowa 3. Murray P., Rosenthal K., Pfaller M. Mikrobiologia. Elsevier, Urban and Partner, 2011. 4. Kayser F., Bienz K., Eckert J., Zinkernagel R. Mikrobiologia lekarska. PZWL, 2007 5. Błaszczyk M.K. Mikrobiologia środowisk. PWN Warszawa 2010 6. Libudzisz Z., Kowal K.: Mikrobiologia techniczna. Tom I i II. Wydaw. Politech. Łódzkiej, Łódź 2009.
19.2. Uzupełniająca 3. Salyers A.A., Whitt D.D.: Mikrobiologia: różnorodność, chorobotwórczość i środowisko. PWN,
Warszawa 2005.
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna - 20 osób
20.2. Materiały do zajęć Zeszyt, długopis.
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Seminaria/Ćwiczenia: sala nr 212, Katedra i Zakład Mikrobiologii i Wirusologii - ul. Jagiellońska 4, Sosnowiec
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Katedra i Zakład Mikrobiologii i Wirusologii, ul. Jagiellońska 4, Sosnowiec. Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
01 Nie spełnia wymagań na ocenę dostateczną
Wymienia podstawowe etapy diagnostyki mikrobiologicznej bez podania ich charakterystyki
Wymienia podstawowe etapy diagnostyki mikrobiologicznej z podaniem i omówieniem ich podstawowej charakterystyki
Wymienia etapy diagnostyki mikrobiologicznej z podaniem i omówieniem ich charakterystyki oraz procedurą wykonania
02 Nie spełnia wymagań na ocenę dostateczną
Wymienia podstawowe zagrożenia i konsekwencje zdrowotne związane z mikrobiologicznym zanieczyszczeniem środowiska bez podania ich charakterystyki
Wymienia podstawowe zagrożenia i konsekwencje zdrowotne związane z mikrobiologicznym zanieczyszczeniem środowiska z podaniem i omówieniem ich podstawowej charakterystyki
Wymienia zagrożenia i konsekwencje zdrowotne związane z mikrobiologicznym zanieczyszczeniem środowiska z podaniem i omówieniem ich szczegółowej charakterystyki
03 Nie spełnia wymagań na ocenę dostateczną
Zna tylko podstawowe zasady pracy w laboratorium mikrobiologicznym pod kątem analizy sanitarnej otoczenia i próbek środowiskowych bez charakterystyki ich praktycznego wykorzystania
Zna zasady pracy w laboratorium mikrobiologicznym pod kątem analizy sanitarnej otoczenia i próbek środowiskowych z ogólną charakterystyką ich praktycznego wykorzystania
Zna zasady pracy w laboratorium mikrobiologicznym pod kątem analizy sanitarnej otoczenia i próbek środowiskowych ze szczegółową charakterystyką ich praktycznego wykorzystania
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: V
6. Nazwa modułu: Moduł biotechnologiczny przedmiotu: Mikroorganizmy w procesach bioremediacji
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Mikrobiologii i Wirusologii 41-200 Sosnowiec, ul. Jagiellońska 4
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Dr hab. n. med. Tomasz Wąsik, prof. nadzw. SUM; [email protected]
10. Cel kształcenia: Zdobycie przez studentów wiedzy z zakresu źródeł i zagrożeń zdrowotnych spowodowanych przez ksenobiotyki wprowadzane do środowiska naturalnego oraz metod biotechnologicznych polegających na zapobieganiu lub ograniczeniu ilości wprowadzonych zanieczyszczeń do wód, gruntów oraz atmosfery, a także na wykorzystaniu mikroorgnizmów w procesach usuwania związków uciążliwych ze środowiska.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: znajomość mikrobiologii ogólnej; znajomość technik biologii molekularnej.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów
kształcenia dla obszaru
01 Zna zagrożenia i konsekwencje zdrowotne związane z zanieczyszczeniem środowiska przez ksenobiotyki i inne związki toksyczne
K1_W20 M1_W04
02 Zna cele i przykłady procesów biotechnologicznych w aspekcie bioremediacji skażonego środowiska
K1_W34 M1_W10
03 Wie, jakie są metody pozyskiwania szczepów mikroorganizmów wykorzystywanych w bioremediacji skażonego środowiska
K1_W39 M1_W10
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 x
02 x
03 x
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Seminaria Liczba godzin
S1 Mikroorganizmy, jako biosensory oraz testy stosowane w monitoringu zanieczyszczenia środowiska
3
S2 Wykorzystanie metod biotechnologicznych w usuwaniu ksenobiotyków zagrażających zdrowiu i życiu człowieka z otaczającego środowiska
3
S3 Proces skriningu mikroorganizmów ze środowiska glebowego 3
S4 Mechanizmy rozkładu związków uciążliwych przez mikroorganizmy 3
S5 Metale ciężkie i ich interakcje w środowisku naturalnym 3
S6 Mechanizmy oporności mikroorganizmów na metale ciężkie 3
S7 Pestycydy – przemiany w środowisku oraz zdrowotne skutki ich stosowania. Mikrobiologiczny rozkład pestycydów
3
S8 Mikrobiologiczne usuwanie produktów ropopochodnych z gleby 3
S9 Antybiotyki – przemiany w środowisku, mikrobiologiczny rozkład 3
S10 Procesy bioremediacji skażonego środowiska 3
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Seminarium Metoda podająca: prelekcja / Metoda problemowa: dyskusja dydaktyczna
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01 Kolokwium pisemne (zadania otwarte) Minimum 60%
02 Kolokwium pisemne (zadania otwarte) Minimum 60%
03 Kolokwium pisemne (zadania otwarte) Minimum 60%
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 30
konsultacje 5
udział w zaliczeniu 3
łącznie 38
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminariów 20
przygotowanie do kolokwium z ćwiczeń 15
łącznie 35
Łącznie 73
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
2
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
1
19. Literatura
19.1. Podstawowa 7. Klimiuk E., Łebkowska M. Biotechnologia w ochronie środowiska. PWN Warszawa 2003 8. Błaszczyk M.K. Mikroorganizmy w ochronie środowiska. PWN Warszawa 2008 9. Błaszczyk M.K. Mikrobiologia środowisk. PWN Warszawa 2010 10. Libudzisz Z., Kowal K.: Mikrobiologia techniczna. Tom I i II. Wydaw. Politech. Łódzkiej, Łódź 2009.
19.2. Uzupełniająca 4. Salyers A.A., Whitt D.D.: Mikrobiologia: różnorodność, chorobotwórczość i środowisko. PWN,
Warszawa 2005.
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna - 20 osób
20.2. Materiały do zajęć Zeszyt, długopis.
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Seminaria/Ćwiczenia: sala nr 212, Katedra i Zakład Mikrobiologii i Wirusologii - ul. Jagiellońska 4, Sosnowiec
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Katedra i Zakład Mikrobiologii i Wirusologii, ul. Jagiellońska 4, Sosnowiec Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
01 Nie spełnia wymagań na ocenę dostateczną
Wymienia podstawowe zagrożenia zdrowotne związane z zanieczyszczeniem środowiska przez związki toksyczne bez podania ich charakterystyki
Wymienia zagrożenia i konsekwencje zdrowotne związane z zanieczyszczeniem środowiska przez związki toksyczne z podaniem ich ogólnej charakterystyki
Wymienia zagrożenia i konsekwencje zdrowotne związane z zanieczyszczeniem środowiska przez związki toksyczne z podaniem ich pełnej charakterystyki
02 Nie spełnia wymagań na ocenę dostateczną
Wymienia podstawowe cele i przykłady procesów biotechnologicznych w aspekcie bioremediacji skażonego środowiska bez podania ich charakterystyki
Wymienia cele i przykłady procesów biotechnologicznych w aspekcie bioremediacji skażonego środowiska z podaniem ich ogólnej charakterystyki
Wymienia cele i przykłady procesów biotechnologicznych w aspekcie bioremediacji skażonego środowiska z podaniem ich pełnej charakterystyki i rozumieniem celowości praktycznego zastosowania
03 Nie spełnia wymagań na ocenę dostateczną
Wymienia podstawowe metody pozyskiwania szczepów mikroorganizmów użytecznych w procesach bioremediacji skażonego środowiska bez ich charakterystyki i praktycznego przeprowadzenia
Wymienia metody pozyskiwania szczepów mikroorganizmów użytecznych w procesach bioremediacji skażonego środowiska z podaniem ich ogólnej charakterystyki i praktycznego przeprowadzenia
Wymienia metody pozyskiwania szczepów mikroorganizmów użytecznych w procesach bioremediacji skażonego środowiska z podaniem ich szczegółowej charakterystyki i praktycznego przeprowadzenia
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: VI
6. Nazwa modułu: Moduł humanistyczny Nazwa przedmiotu: Etyczne wyzwania biotechnologii
7. Status przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca przedmiot: Katedra Nauk Społecznych
41-200 Sosnowiec, ul. Ostrogórska 30, tel. 32 3641370
9. Prowadzący przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): dr Mieczysław Juda; [email protected]
10. Cel kształcenia: W oparciu o podbudowę ̨klasycznych koncepcji etycznych dla kultury Zachodu wyposażenie studentów w wiedzę dotyczącą ̨bioetyki i etycznych granic w nauce.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji:
Ogólne przygotowanie w zakresie dyscyplin humanistycznych filozofii, socjologii, psychologii.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01
zna podstawowe pojęcia z zakresu etyki, deontologii i
bioetyki, jak i mechanizmy psychospołeczne związane ze
zdrowiem
K1_W21 M1_W04
02 zna zasady prawne, organizacyjne i etyczne
uwarunkowania działalności zawodowej biotechnologa
K1_W31 M1_W08
03
posiada umiejętność rozumienia społecznych
uwarunkowań biotechnologii; oceny korzyści i ryzyka
wykorzystywania biotechnologii; stosowania procedur
ochrony intelkektualnej i własności przemysłowej
K1_U13 M1_U03
04 rozumie podstawowe problemy etyczne dotyczące
współczesnej medycyny, ochrony życia i zdrowia
K1_K09 M1_K05
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
03 X
04 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
Łącznie 0
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1 Bioetyka jako etyka współczesności 2
S2 Ingerencje genetyczne i argument “równi pochyłej” 2
S3 Eugenika – odnowiony demon 2
S4 Fantazmat klonowania człowieka 2
S5 Mapowanie ludzkiego genomu: technika vs. etyka 2
S6 Patentowanie danych genetycznych i własność wiedzy 2
S7 Etyczne problemy badań naukowych, granice eksperymentu medycznego
2
S8 Europejska Konwencja Bioetyczna 1
Łącznie 15
14.3. Forma zajęć: Ćwiczenia
Łącznie 0
Łączna liczba godzin z przedmiotu 15
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład -
15.2. Seminarium Dyskusja treści przygotowanych i przedstawionych prezentacji
15.3. Ćwiczenie -
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 przedstawienie przygotowanej prezentacji
udział w zajęciach,
przygotowanie prezentacji
02 przedstawienie przygotowanej prezentacji
udział w zajęciach,
przygotowanie prezentacji
03 przedstawienie przygotowanej prezentacji
udział w zajęciach,
przygotowanie prezentacji
04 przedstawienie przygotowanej prezentacji
udział w zajęciach,
przygotowanie prezentacji
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 15
konsultacje 3
udział w zaliczeniu 2
łącznie 20
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminarium 15
przygotowanie prezentacji 10
Łącznie 25
Łącznie 45
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 2
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
1
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
0
19. Literatura
19.1. Podstawowa: 6. A. Alichniewicz, A.Szczęsna [red.], Dylematy bioetyki, Warszawa 2001 7. L. Ostasz, Dobre, złe, odpowiedzialne, sprawiedliwe: definicje i objaśnienia pojęć z etyki,
Warszawa 2010 8. K. Szewczyk, Bioetyka. Medycyna na granicach życia, Warszawa 2009
19.2. Uzupełniająca: 1. T.Biesaga, Podstawy i zastosowania bioetyki, Kraków 2001 2. T.Biesaga [red.], Bioetyka polska, Kraków 2004 3. B.Chyrowicz, Bioetyka i ryzyko: argument "równi pochyłej w dyskusji wokół osiągnięć
współczesnej genetyki, Lublin 2000 4. H.Ciążela, Problemy i dylematy etyki odpowiedzialności globalnej, Warszawa 2006 5. J.Hartman, Bioetyka dla lekarzy, Warszawa 2012 6. J.Łukomski, Elementy ekologii i ekoetyki, Kielce 2000
20. Inne przydatne informacje o przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna – 20 osób
20.2. Materiały do zajęć Wybrane materiały w formie elektronicznej umieszczane są na stronie internetowej Zakładu (poniżej)
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Sala seminaryjna Zakładu Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Zakład Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne Strona internetowa Zakładu: biotechnologia.sum.edu.pl (zakładka: studenci)
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
01
student ma ogólną i dotyczącą głównych wątków orientację w przedmiocie sprawy
student zasadniczo prawidłowo rozpoznaje wszystkie aspekty zagadnienia
student prawidłowo w pełnym zakresie operuje przedmiotowym materiałem
student samodzielnie operuje przedmiotowym materiałem i potrafi dokonywać jego krytycznego rozbioru
02
student ma ogólną i dotyczącą głównych wątków orientację w przedmiocie sprawy
student zasadniczo prawidłowo rozpoznaje wszystkie aspekty zagadnienia
student prawidłowo w pełnym zakresie operuje przedmiotowym materiałem
student samodzielnie operuje przedmiotowym materiałem i potrafi dokonywać jego krytycznego rozbioru
03
student ma ogólną i dotyczącą głównych wątków orientację w przedmiocie sprawy
student zasadniczo prawidłowo rozpoznaje wszystkie aspekty zagadnienia
student prawidłowo w pełnym zakresie operuje przedmiotowym materiałem
student samodzielnie operuje przedmiotowym materiałem i potrafi dokonywać jego krytycznego rozbioru
04
student ma ogólną i dotyczącą głównych wątków orientację w przedmiocie sprawy
student zasadniczo prawidłowo rozpoznaje wszystkie aspekty zagadnienia
student prawidłowo w pełnym zakresie operuje przedmiotowym materiałem
student samodzielnie operuje przedmiotowym materiałem i potrafi dokonywać jego krytycznego rozbioru
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia
3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: VI
6. Nazwa modułu: Moduł humanistyczny
Nazwa przedmiotu: Historia filozofii
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra Nauk Społecznych
Zakład Historii Medycyny i Farmacji, 41-200 Sosnowiec, ul. Ostrogórska 30 tel/fax:32)3641370, e-mail: [email protected]
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail):
dr n. med. Marcin Leśniewski e-mail: [email protected]
10. Cel kształcenia: pozyskanie wiedzy z zakresu historii filozofii ze szczególnym uwzględnieniem
zagadnień filozoficznych w przyrodoznawstwie, uzyskanie umiejętności racjonalnego wykorzystania
zdobytej wiedzy do rozwiązywaniu problemów filozoficznych związanych z wykonywaniem zawodu
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: podstawowa wiedza z
zakresu nauk humanistycznych i przyrodniczych na poziomie ogólnego wykształcenia średniego,
umiejętność czytania ze zrozumieniem oraz pozyskiwania informacji z różnych źródeł.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów
kształcenia dla programu
Odniesienie do
efektów kształcen
ia dla obszaru
01 zna podstawowe pojęcia z zakresu etyki, deontologii i bioetyki, jak i mechanizmy psychospołeczne związane ze zdrowiem
K1_W21 M1_W04
02 zna zasady prawne, organizacyjne i etyczne uwarunkowania działalności zawodowej biotechnologa
K1_U13 M1_W08
03 posiada umiejętność rozumienia społecznych uwarunkowań biotechnologii; oceny korzyści i ryzyka wykorzystywania biotechnologii; stosowania procedur ochrony intelektualnej i własności przemysłowej
K1_U13 M1_U03
04 potrafi wykorzystać technologie informacyjne do wyszukiwania potrzebnych informacji oraz do samodzielnego i twórczego rozwiązywania problemów
K1_U23 M1_U06
05 rozumie potrzebę ustawicznego uczenia się K1_K01 M1_K01
06 potrafi postępować zgodnie z zasadami etycznymi i uregulowaniami prawnymi związanymi z wykonywanym zawodem
K1-K08 M1-K05
07 rozumie podstawowe problemy etyczne dotyczące współczesnej medycyny, ochrony życia i zdrowia
K1_K09 M1_K05
08 jest zdolny do prowadzenia dialogu partnerskiego
K1_K10 M1_K05
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne
ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
02 X
01 X
03 X
04 X
05 X
06 X
07 X
08 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Seminaria Liczba godzin
S1 Wprowadzenie w formę zajęć dydaktycznych 1
S2 Struktura filozofii jako nauki 2
S3 Filozofia przyrody 2
S4 Teorie poznania, procesy naukotwórcze, granice poznania 2
S5 Zmiany paradygmatu medycyny w czasie 2
S6 Życie jako wartość 2
S7 Problemy etyczne biotechnologii 2
S8 Piękno – podstawy estetyki 2
Łącznie 15
Łączna liczba godzin z przedmiotu 15
15. Metody kształcenia
15.1. Seminarium Prelekcja, debata oxfordzka, dyskusja, film, metoda tekstu przewodniego
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01 Ocena aktywności na zajęciach, praca zaliczeniowa 60% aktywnego uczestnictwa
i sporządzenie eseju zaliczeniowego
02 Ocena aktywności na zajęciach, praca zaliczeniowa
60% aktywnego uczestnictwa i sporządzenie eseju zaliczeniowego
03 Ocena aktywności na zajęciach, praca zaliczeniowa
60% aktywnego uczestnictwa i sporządzenie eseju zaliczeniowego
04 Ocena aktywności na zajęciach, praca zaliczeniowa
60% aktywnego uczestnictwa i sporządzenie eseju zaliczeniowego
05 Ocena aktywności na zajęciach, praca zaliczeniowa
60% aktywnego uczestnictwa i sporządzenie eseju zaliczeniowego
06 Ocena aktywności na zajęciach, praca zaliczeniowa
60% aktywnego uczestnictwa i sporządzenie eseju zaliczeniowego
07 Ocena aktywności na zajęciach, praca zaliczeniowa
60% aktywnego uczestnictwa i sporządzenie eseju zaliczeniowego
08 Ocena aktywności na zajęciach, praca zaliczeniowa
60% aktywnego uczestnictwa i sporządzenie eseju zaliczeniowego
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 15
konsultacje 3
Udział w zaliczeniu 2
łącznie 20
Samodzielna praca studenta
przygotowanie pracy zaliczeniowej 15
przygotowanie do seminarium 15
łącznie 30
Łącznie 50
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 2
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
2
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
19. Literatura
19.1. Podstawowa
1. Tatarkiewicz W.: Historia filozofii 2. Heller M.: Filozofia przyrody
19.2. Uzupełniająca
1. Szumowski W.: Filozofia medycyny 2. Tischner J.: Historia filozofii po góralsku 3. Grobler A.: Metodologia nauk 4. Szczeklik A.: Kore
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna – 20 osób
20.2. Materiały do zajęć
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Zakład Historii Medycyny i Farmacji Katedry Nauk Społecznych
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Zakład Historii Medycyny i Farmacji Katedry Nauk Społecznych Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
01 brak obecności i pracy
zaliczeniowej
Obecność na zajęciach Obecność na zajęciach
oraz praca
zaliczeniowa
Obecność i aktywność
na zajęciach oraz praca
zaliczeniowa
02 brak obecności i pracy
zaliczeniowej
Obecność na zajęciach Obecność na zajęciach
oraz praca
zaliczeniowa
Obecność i aktywność
na zajęciach oraz praca
zaliczeniowa
03 brak obecności i pracy
zaliczeniowej
Obecność na zajęciach Obecność na zajęciach
oraz praca
zaliczeniowa
Obecność i aktywność
na zajęciach oraz praca
zaliczeniowa
04 brak obecności i pracy
zaliczeniowej
Obecność na zajęciach Obecność na zajęciach
oraz praca
zaliczeniowa
Obecność i aktywność
na zajęciach oraz praca
zaliczeniowa
05 brak obecności i pracy
zaliczeniowej
Obecność na zajęciach Obecność na zajęciach
oraz praca
zaliczeniowa
Obecność i aktywność
na zajęciach oraz praca
zaliczeniowa
06 brak obecności i pracy
zaliczeniowej
Obecność na zajęciach Obecność na zajęciach
oraz praca
zaliczeniowa
Obecność i aktywność
na zajęciach oraz praca
zaliczeniowa
07 brak obecności i pracy
zaliczeniowej
Obecność na zajęciach Obecność na zajęciach
oraz praca
zaliczeniowa
Obecność i aktywność
na zajęciach oraz praca
zaliczeniowa
08 brak obecności i pracy
zaliczeniowej
Obecność na zajęciach Obecność na zajęciach
oraz praca
zaliczeniowa
Obecność i aktywność
na zajęciach oraz praca
zaliczeniowa
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5
„bardzo dobry”
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: VI
6. Nazwa modułu: Moduł humanistyczny Nazwa przedmiotu: Psychologia
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Zakład Psychologii, Katedra Filozofii i Nauk Humanistycznych, WNoZ ul. Medyków 12, 40-752 Katowice, tel. 32/2088645 (sekretariat), email: [email protected] http://zakladpsychologii.sum.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Agata Wons, [email protected] Kierownik jednostki: dr n. hum. Monika Bąk-Sosnowska, [email protected], tel. 32/2088642,
10. Cel kształcenia: 1. Nabycie przez studentów podstawowej wiedzy z zakresu psychologii ogólnej z elementami psychologii
społecznej i psychologii zdrowia. 2. Nabycie podstawowej wiedzy dot. stresu oraz umiejętności radzenia sobie ze stresem. 3. Zdobycie podstawowych umiejętności dot. efektywnej komunikacji. 4. Zdobycie podstawowych umiejętności z zakresu współpracy w grupie, rozwiązywania konfliktów.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: brak
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Student potrafi zdefiniować podstawowe pojęcia psychologiczne z zakresu psychologii ogólnej, społecznej i zdrowia
K1_W21 K1_W23 K1_W24 K1_06
K1_K07
M1_W04 M1_W06 M1_U03 M1_K04
02 Student potrafi wykorzystać metody skutecznej komunikacji w praktyce (praca w zespole)
K1_W21 K1_W23 K1_W24 K1_06
K1_K07
M1_W04 M1_W06 M1_U03 M1_K04
03 Student posiada wiedzę dotyczącą konstruktywnego radzenia sobie ze stresem i podstawowe umiejętnosci w tym obszarze
K1_W21 K1_W23 K1_W24 K1_06
K1_K07
M1_W04 M1_W06 M1_U03 M1_K04
04 Student rozumie rolę czynników psychologicznych w sytuacji choroby oraz wpływ stresu na zdrowie
K1_W21 K1_W23 K1_W24 K1_U13
M1_W04 M1_W06 M1_U03 M1_K04
05 Student posiada informacje dotyczące podstaw psychologii społecznej
K1_W21 K1_W23 K1_W24 K1_U13
06 Student nabywa podstawowych umiejętności z zakresu współpracy w grupie, analizy zachowania i radzenia sobie w sytuacji konfliktu interpersonalnego
K1_W21 K1_W23 K1_W24 K1_06
K1_K07
M1_W04 M1_W06 M1_U03 M1_K04
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
03 X
04 X
05 X
06 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
W1 - 0
Łącznie 0
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1 Jak funkcjonuje każdy z nas? – procesy poznawczo-emocjonalne. 2
S2 Interakcje społeczne - spostrzeganie i komunikacja interpersonalna. 2
S3 Skuteczna komunikacja: język ja i asertywność. 2
S4 Elementy psychologii społecznej – współpraca w grupie, konflikty, negocjacje.
2
S5 Różnice indywidualne – temperament a osobowość. Wpływ czynników osobowościowych na zdrowie.
2
S6 Związek umysłu z ciałem – psychosomatyka, efekt placebo. 2
S7 Stres i radzenie sobie ze stresem. 3
Łącznie 15
Łączna liczba godzin z przedmiotu 15
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład -
15.2. Seminarium wykład konwersatoryjny, dyskusja, metody aktywizujące (inscenizacja, gry dydaktyczne, burza mózgów, elementy psychodramy)
15.3. Ćwiczenia praktyczne
-
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01 Sprawdzian pisemny (pytania otwarte) min. 60% poprawnych odpowiedzi
02 obserwacja ocena aktywności na zajęciach
03 Sprawdzian pisemny (pytania otwarte) min. 60% poprawnych odpowiedzi
04 Sprawdzian pisemny (pytania otwarte) min. 60% poprawnych odpowiedzi
05 Sprawdzian pisemny (pytania otwarte) min. 60% poprawnych odpowiedzi
06 obserwacja ocena aktywności na zajęciach
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w wykładach -
udział w ćwiczeniach 15
obecność na zaliczeniu pisemnym 2
konsultacje 2
łącznie 19
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminarium 10
przygotowanie do kolokwium z seminarium 10
przygotowanie do zaliczenia 5
przygotowanie do egzaminu końcowego -
łącznie 25
Łącznie 44
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 2
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
1
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
-
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Trzcieniecka-Green (red.). Psychologia. Podręcznik dla studentów kierunków medycznych,
Wydawnictwo Universitas, Kraków 2006 2. Aronson E., Wilson T., Akert R., Psychologia społeczna. Serce i umysł. Zysk i S-ka, Poznań 2006 3. Bishop GD, Psychologia zdrowia, Wydawnictwo Astrum, Wrocław 2000 4. Wirga M., Zwyciężyć chorobę, Wydawnictwo KOS, Katowice 2002
19.2. Uzupełniająca 1. Chełpa S., Witkowski T., Psychologia konfliktów, Santorski & CO, Wydawnictwo Czarna owca,
Warszawa 2004 2. Heszen I., Psychologia stresu, PWN, Warszawa 2013 3. Ogińska-Bulik N., Juczyński Z., Osobowość stres a zdrowie, Wyd. Difin, Warszawa 2010 4. Salmon P., Psychologia w medycynie-wspomaga współpracę z pacjentem i proces leczenia, GWP, 2002 5. Zimbardo Philip G., Gerrig Richard J., Psychologia i życie, PWN, Warszawa 2012
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna – 20 osób
20.2. Materiały do zajęć -
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
wg harmonogramu
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Zakład Psychologii WNoZ ul. Medyków 12 (pokój 212), Katowice Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne -
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01 Student nie potrafi zdefiniować podstawowe pojęć psychologicznych z zakresu psychologii
Student w niewielkim stopniu potrafi zdefiniować podstawowe pojęcia psychologiczne z
Student w umiarkowanym stopniu potrafi zdefiniować podstawowe pojęcia
Student w pełni potrafi zdefiniować podstawowe pojęcia psychologiczne z zakresu psychologii
ogólnej, społecznej i zdrowia
zakresu psychologii ogólnej, społecznej i zdrowia
psychologiczne z zakresu psychologii ogólnej, społecznej i zdrowia
ogólnej, społecznej i zdrowia
Efekt 02 Student nie rozumie podstawowych procesów komunikacji i nie potrafi wykorzystać w praktyce metod skutecznej komunikacji
Student posiada podstawową umiejętność rozumienia procesów komunikacji i w niewielkim stopniu wykorzystuje metody skutecznej komunikacji
Student posiada dobrą umiejętność rozumienia procesów komunikacji i w umiarkowanym stopniu wykorzystuje metody skutecznej komunikacji
Student posiada bardzo dobrą umiejętność rozumienia procesów komunikacji i w pełni wykorzystuje metody skutecznej komunikacji
Efekt 03 Student nie posiada wiedzy dotyczącej stresu i konstruktywnego radzenia sobie ze stresem oraz podstawowych umiejętnosci w tym obszarze
Student w niewielkim stopniu posiada wiedzę dotyczącą stresu i konstruktywnego radzenia sobie ze stresem oraz niewielkie umiejętnosci w tym obszarze
Student w umiarkowanym stopniu posiada wiedzę dotyczącą stresu i konstruktywnego radzenia sobie ze stresem oraz umiarkowane umiejętnosci w tym obszarze
Student posiada bardzo dobrą wiedzę dotyczącą stresu i konstruktywnego radzenia sobie ze stresem oraz umiejętnosci w tym obszarze
Efekt 04 Student nie rozumie roli czynników psychologicznych w sytuacji choroby oraz wpływu stresu na zdrowie
Student w podstawowym stopniu rozumie rolę czynników psychologicznych w sytuacji choroby oraz wpływ stresu na zdrowie
Student w umiarkowanym stopniu rozumie rolę czynników psychologicznych w sytuacji choroby oraz wpływ stresu na zdrowie
Student w pełni rozumie rolę czynników psychologicznych w sytuacji choroby oraz wpływ stresu na zdrowie
Efekt 05 Student w niewystarczajacym stopniu omawia zagadnienia dotyczące podstaw psychologii społecznej
Student w niewielkim stopniu omawia zagadnienia dotyczące podstaw psychologii społecznej
Student w umiarkowanym stopniu omawia zagadnienia dotyczące podstaw psychologii społecznej
Student w pełni omawia zagadnienia dotyczące podstaw psychologii społecznej
Efekt 06 Student w niewystarczajacym stopniu posiada umiejętności współpracy w grupie, analizy zachowania i radzenia sobie z konfliktem
Student w niewielkim stopniu posiada umiejętności współpracy w grupie, analizy zachowania i radzenia sobie z konfliktem
Student w umiarkowanym stopniu posiada umiejętności współpracy w grupie, analizy zachowania i radzenia sobie z konfliktem
Student posiada bardzo dobrą umiejętność współpracy w grupie, analizy zachowania i radzenia sobie z konfliktem
Karta modułu
Informacje ogólne o module
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: VI
6. Nazwa modułu: Moduł biotechnologiczny Nazwa przedmiotu: Identyfikacja GMO
7. Status modułu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł: Zakład Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej 41-200 Sosnowiec ul. Jedności 8 tel. 32 364 12 73 http://biotechnologia.sum.edu.pl/
9. Prowadzący moduł (imię, nazwisko, adres e-mail): Dr hab. Ilona Bednarek, [email protected]
10. Cel kształcenia: W zakresie wiedzy: poznanie możliwości wykorzystania aspektów modyfikacji genetycznej w obszarach przemysłu, medycyny i biotechnologii; znajomość podstawowych modyfikacji genetycznych roślin i zwierząt oraz ich zastosowania; umiejętność opisu i charakteryzacji podstawowych pojęć związanych z transgenezą i ksenotransplantacją. W zakresie umiejętności: zdobycie umiejętności w zakresie detekcji modyfikacji genetycznych w materiale roślinnym i zwierzęcym wybranymi technikami molekularnymi. Nabycie umiejętności w zakresie transfekcji komórek zwierzęcych wirusami PERV oraz ich detekcji w tym materiale.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Student powinien posiadać gruntowną wiedzę z zakresu biologii molekularnej i biologii komórki. Niezbędna jest umiejętność wykonywania podstawowych obliczeń chemicznych i matematycznych Powinien wykazywać się umiejętnościami praktycznymi dotyczącymi używania prostych sprzętów laboratoryjnych. Powinien potrafić zarówno samodzielnie wykonać ćwiczenie na podstawie otrzymanej instrukcji jak i pracować w grupie.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01
Student posiada wiedzę na temat modyfikacji genetycznych występujących w produktach spożywczych
pochodzenia roślinnego i zwierzęcego. Potrafi wykryć wybrane rodzaje modyfikacji poznanymi technikami
molekularnymi.
K1_W03 K1_W04 K1_W05 K1_W16 K1_U11 K1_U43 K1_K06
M1_W01 M1_W03 M1_U12 M1_K04
02
Student potrafi scharakteryzować wpływ stopnia przetworzenia materiału roślinnego na proces
degradacji kwasów nukleinowych i białek. Potrafi ocenić zawartość GMO za pomocą wybranych rodzajów technik
molekularnych
K1_U11 K1_U43 K1_K06
M1_U02 M1_U12 M1_K04
03
Student potrafi ocenić różnice pomiędzy zwierzętami z modyfikacją genetyczną a zwierzętami typu dzikiego. Umie
zastosować wybrane techniki molekularne w celu ustalenia różnić między osobnikami transgenicznymi a
dzikimi oraz określać rodzaje tych różnić.
K1_U11 K1_U14 K1_U43 K1_K06
M1_U02 M1_U03 M1_U12 M1_K04
04
Student zna i potrafi scharakteryzować pojęcia związane z wprowadzaniem materiału genetycznego do żywych organizmów. Umie wymienić części składowe wektorów zawierających obce DNA oraz procesy związane z transgenezą. Posiada umiejętność detekcji wirusa PERV w komórkach transfekowanych wybranymi technikami molekularnymi.
K1_W38 K1_U11 K1_U14 K1_U43 K1_K06
M1_W10 M1_U02 M1_U03 M1_U12 M1_K04
05
Student wykazuje znajomość tematyki ksenotransplantacji. Umie scharakteryzować wady i zalety zwierząt będących potencjalnymi dawcami narządów do przeszczepów dla człowieka oraz modyfikacje genetyczne
jakim zostały poddane takie zwierzęta.
K1_W38 K1_U37
M1_W10 M1_U10
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
03 X
04 X
05 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
Łącznie 0
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1
Rośliny genetycznie zmodyfikowane i perspektywy ich wykorzystania. Obecna produkcja roślin genetycznie zmodyfikowanych i współistnienie (koegzystencja) upraw GMO z innymi sposobami produkcji.
3
S2 Warunki kontroli artykułów spożywczych w zakresie zawartości organizmów genetycznie Zależność degradacji DNA i białek od stopnia przetworzenia materiału roślinnego.
3
S3 Analizy DNA (kompetytywny PCR, PCR w czasie rzeczywistym, Nested PCR) i białek (ELISA, paski z przepływem bocznym ) stosowane do detekcji GMO.
3
S4 Sekwencje najczęściej występujące w GMO (transgen; promotor konstytutywny, tkankowo specyficzny; terminator; geny selekcyjne, geny reporterowe).
3
S5
Zwierzęta genetycznie zmodyfikowane. Zastosowanie transgenicznych zwierząt w biomedycynie, ksenotransplantacja. Modyfikacje genetyczne zwierzęcych dawców narządów, zoonozy-infekcje odzwierzęce. Genotypowanie zwierząt transgenicznych.
3
S6
Badanie próbek żywności na obecność GMO. Amplifikacja DNA specyficznego dla roślinnego genomu (soja-lektyna, kukurydza-zeina). Screeningowe metody detekcji roślin GM (promotor 35S, terminator nos).Specyficzna detekcja roślin GMO ( kukurydza MON810, Bt-176, soja Roundup Ready).
3
S7 Wykrywanie GMO metodą jakościowego i ilościowego PCR (kompetytywny PCR, PCR w czasie rzeczywistym). Kalkulacja
zawartości GMO (metoda ct, krzywa standardowa) 3
S8
Amplifikacja na matrycy DNA pochodzącego od myszy transgenicznych i niemodyfikowanych genetycznie umożliwiająca identyfikacje typu dzikiego i osobnika transgenicznego heterozygotycznego i homozygotycznego.
3
S9 Infekcja komórek ludzkich wirusem PERV pochodzącym od świni domowej- potencjalnego dawcy narządów, detekcja prowirusa i wirionu PERV.
6
Łącznie 30
Łączna liczba godzin z modułu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład
15.2. Seminarium Prelekcja, pokaz, dyskusja problemowa, metody programowane z użyciem komputera
15.3. Ćwiczenie Ćwiczenia laboratoryjne, metody programowane z użyciem komputera,
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01
Zaliczenie pisemne weryfikujący wiedzę i umiejętności. Ustna weryfikacja wiedzy studenta na początku ćwiczenia. Zaliczenie ćwiczenia laboratoryjnego na podstawie wykonania praktycznego i przygotowania sprawozdania.
Udzielenie prawidłowych i wyczerpujących odpowiedzi na minimum 50% pytań w ramach odpowiedzi ustnej i zaliczenia pisemnego. Prawidłowo przygotowane sprawozdanie z ćwiczeń praktycznych.
02
Zaliczenie pisemne weryfikujący wiedzę i umiejętności. Ustna weryfikacja wiedzy studenta na początku ćwiczenia. Zaliczenie ćwiczenia laboratoryjnego na podstawie wykonania praktycznego i przygotowania sprawozdania.
Udzielenie prawidłowych i wyczerpujących odpowiedzi na minimum 50% pytań w ramach odpowiedzi ustnej i zaliczenia pisemnego. Prawidłowo przygotowane sprawozdanie z ćwiczeń praktycznych.
03
Zaliczenie pisemne weryfikujący wiedzę i umiejętności. Ustna weryfikacja wiedzy studenta na początku ćwiczenia. Zaliczenie ćwiczenia laboratoryjnego na podstawie wykonania praktycznego i przygotowania sprawozdania.
Udzielenie prawidłowych i wyczerpujących odpowiedzi na minimum 50% pytań w ramach odpowiedzi ustnej i zaliczenia pisemnego. Prawidłowo przygotowane sprawozdanie z ćwiczeń praktycznych.
04
Zaliczenie pisemne weryfikujący wiedzę i umiejętności. Ustna weryfikacja wiedzy studenta na początku ćwiczenia. Zaliczenie ćwiczenia laboratoryjnego na podstawie wykonania praktycznego i przygotowania sprawozdania.
Udzielenie prawidłowych i wyczerpujących odpowiedzi na minimum 50% pytań w ramach odpowiedzi ustnej i zaliczenia pisemnego. Prawidłowo przygotowane sprawozdanie z ćwiczeń praktycznych.
05 Zaliczenie pisemne weryfikujący wiedzę i umiejętności. Ustna weryfikacja wiedzy studenta na początku ćwiczenia
Udzielenie prawidłowych i wyczerpujących odpowiedzi na minimum 50% pytań w ramach odpowiedzi ustnej i zaliczenia pisemnego.
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w wykładach 0 h
udział w seminariach 30 h
obecność na zaliczeniu pisemnym 2 h
konsultacje 5 h
łącznie 37 h
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminarium 13 h
przygotowanie do kolokwium z seminariów 10 h
przygotowanie do zaliczenia z przedmiotu 10 h
łącznie 33 h
Łącznie 70 h
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla modułu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące moduł
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
1
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
1
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Red. Bednarek I.: Inżynieria genetyczna i terapia genowa. Zagadnienia podstawowe i aspekty
praktyczne. SUM Katowice 2008 2. Red. Bednarek I.: Wybrane zagadnienia naukowo-badawcze inżynierii genetycznej i terapii genowej.
SUM Katowice 2009 3. Malepszy S. Biotechnologia roślin. Wydawnictwo Naukowe PWN. Warszawa 2004. 4. John Bishop: Ssaki transgeniczne. Wydawnictwo Naukowe PWN 2001
19.2. Uzupełniająca 1. Jasiński A, Słomski R, Szalata M, Lipiński D, Transplantacja narządów – wyzwanie dla biotechnologii.
Biotechnologia 2006, 1 (72) 7-28 2. Woźny A., Przybył K.: Komórki roślinne w warunkach stresu. Komórki in vitro. Wydawnictwo
Naukowe UAM. Poznań 2004.
20. Inne przydatne informacje o module
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna – 20 osób
20.2. Materiały do zajęć Wybrane materiały w formie elektronicznej umieszczane są na stronie internetowej Zakładu (poniżej)
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
Ćwiczenia i seminaria: sala ćwiczeń Zakładu Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Zakład Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne Strona internetowa Zakładu: biotechnologia.sum.edu.pl (zakładka: studenci)
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01
Student nie potrafi wymienić przykładów
roślin modyfikowanych genetycznie oraz
omawianych metod ich detekcji
lub/i Jest nieobecny na
minimum 20% godzin seminaryjnych.
lub/i Nie przygotowuje
sprawozdania bądź zawiera ono braki lub
błędy istotnie wpływające na
możliwość interpretacji wyników doświadczenia
Student jest obecny na minimum 80%
godzin seminaryjnych.
Potrafi wymienić przykłady
roślin modyfikowanych
genetycznie i ogólnie je scharakteryzować
genetycznie oraz wymienić omawiane metody ich detekcji
Przygotowuje sprawozdanie z
niewielką pomocą osób prowadzących
zajęcia bądź przygotowane
samodzielnie, zawiera braki lub błędy, które
w znaczny sposób wpływają na możliwość
interpretacji wyników doświadczenia.
.
Student jest obecny na minimum 80%
godzin seminaryjnych.
Potrafi wymienić i
scharakteryzować przykłady roślin modyfikowanych genetycznie oraz
wymienić i scharakteryzować
metody ich detekcji. Samodzielnie przygotowuje
sprawozdanie, które zawiera niewielkie
braki lub błędy, które w nieznaczny sposób
wpływają na możliwość
interpretacji wyników doświadczenia.
Student jest obecny na minimum 80%
godzin seminaryjnych. Potrafi
dokładnie wymienić i szczegółowo
scharakteryzować przykłady roślin modyfikowanych genetycznie oraz
wymienić i scharakteryzować
metody ich detekcji. Samodzielnie przygotowuje
sprawozdanie, rzetelnie podsumowujące przeprowadzone
ćwiczenie.
Efekt 02
Student nie potrafi wymienić warunków kontroli artykułów
spożywczych pod kątem zawartości GMO
lub/i Nie potrafi wykryć GMO
poznanymi na ćwiczeniach wybranymi
technikami molekularnymi
lub/i Nie przygotowuje
sprawozdania bądź zawiera ono braki lub
błędy istotnie wpływające na
możliwość interpretacji wyników
doświadczenia. lub/i
Student jest obecny na minimum 80%
godzin ćwiczeniowych.
Potrafi wymienić warunki kontroli
artykułów spożywczych pod
katem GMO. Potrafi wykryć GMO
poznanymi na ćwiczeniach wybranymi technikami
molekularnymi. Przygotowuje
sprawozdanie z niewielką pomocą
osób prowadzących zajęcia bądź
przygotowane
Student jest obecny na minimum 80%
godzin ćwiczeniowych.
Potrafi wymienić i scharakteryzować warunki kontroli
artykułów spożywczych pod
kątem GMO. Potrafi wykryć GMO
poznanymi na ćwiczeniach wybranymi technikami
molekularnymi. Samodzielnie przygotowuje
sprawozdanie, które zawiera niewielkie
braki lub błędy, które
Student jest obecny na minimum 80%
godzin ćwiczeniowych. Potrafi wymienić i
dokładnie scharakteryzować warunki kontroli
artykułów spożywczych pod kątem GMO.
Potrafi wykryć GMO poznanymi na
ćwiczeniach wybranymi technikami
molekularnymi. Samodzielnie przygotowuje
sprawozdanie, rzetelnie podsumowujące przeprowadzone
ćwiczenie.
Jest nieobecny na minimum 20% godzin
ćwiczeniowych.
samodzielnie, zawiera braki lub błędy, które
w znaczny sposób wpływają na możliwość
interpretacji wyników doświadczenia.
w nieznaczny sposób wpływają na możliwość
interpretacji wyników doświadczenia.
Efekt 03
Student nie potrafi wymienić omawianych technik molekularnych służących do detekcji
mutacji występujących u zwierząt
transgenicznych lub/i
Nie potrafi wykazać istotnych różnic
pomiędzy myszami transgenicznymi a
myszami typu dzikiego lub/i
Jest nieobecny na minimum 20% godzin
seminaryjnych.
Student jest obecny na minimum 80%
godzin seminaryjnych. Student potrafi
wymienić omawiane techniki molekularne służących do detekcji
mutacji występujących u
zwierząt transgenicznych. Student stosując poznane metody detekcji potrafi wykazać różnice
pomiędzy myszami transgenicznymi a
myszami typu dzikiego popełniając przy tym niewielkie
błędy.
Student jest obecny na minimum 80%
godzin seminaryjnych. Student potrafi
wymienić i scharakteryzować omawiane techniki
molekularne służących do detekcji
mutacji występujących u
zwierząt transgenicznych. Student stosując poznane metody detekcji potrafi wykazać różnice
pomiędzy myszami transgenicznymi a
myszami typu dzikiego.
Student jest obecny na minimum 80%
godzin seminaryjnych. Student potrafi
wymienić i szczegółowo scharakteryzować omawiane techniki
molekularne służących do detekcji mutacji występujących u
zwierząt transgenicznych. Student stosując poznane metody
detekcji potrafi wykazać różnice pomiędzy
myszami transgenicznymi a
myszami typu dzikiego.
Efekt 04
Student nie zna podstawowych pojęć
związanych z transgenezą. Nie potrafi
wymienić najważniejszych
elementów wchodzących w skład wektorów służących jako nośniki obcych
genów. lub/i
Nie potrafi wykryć obecności wirusa PERV
w komórkach transfekowanych
poznanymi metodami detekcji
lub/i
Student jest obecny na minimum 80%
godzin ćwiczeniowych.
Student zna podstawowe pojęcia
związane z transgenezą. Potrafi
wymienić najważniejsze
elementy wchodzących w skład wektorów służących jako nośniki obcych
genów. Potrafi z pomocą
prowadzącego wykryć obecności wirusa
PERV w komórkach
Student jest obecny na minimum 80%
godzin ćwiczeniowych.
Student zna i potrafi krótko
scharakteryzować podstawowe pojęcia
związane z transgenezą. Potrafi
wymienić i scharakteryzować
najważniejsze elementy
wchodzących w skład wektorów służących jako nośniki obcych
genów.
Student jest obecny na minimum 80%
godzin ćwiczeniowych. Student zna i potrafi
szczegółowo scharakteryzować
podstawowe pojęcia związane z transgenezą.
Potrafi wymienić i szczegółowo
scharakteryzować najważniejsze elementy
wchodzących w skład wektorów służących jako nośniki obcych
genów. Potrafi wykryć
obecności wirusa PERV w komórkach
Nie przygotowuje sprawozdania bądź
zawiera ono braki lub błędy istotnie
wpływające na możliwość interpretacji
wyników doświadczenia.
lub/i Jest nieobecny na
minimum 20% godzin ćwiczeniowych.
transfekowanych poznanymi metodami
detekcji. Przygotowuje
sprawozdanie z niewielką pomocą
osób prowadzących zajęcia bądź
przygotowane samodzielnie, zawiera braki lub błędy, które
w znaczny sposób wpływają na możliwość
interpretacji wyników doświadczenia.
Potrafi wykryć obecności wirusa
PERV w komórkach transfekowanych
poznanymi metodami detekcji.
Samodzielnie przygotowuje
sprawozdanie, które zawiera niewielkie
braki lub błędy, które w nieznaczny sposób
wpływają na możliwość
interpretacji wyników doświadczenia.
transfekowanych poznanymi metodami
detekcji. Samodzielnie przygotowuje
sprawozdanie, rzetelnie podsumowujące przeprowadzone
ćwiczenie.
Efekt 05
Student nie potrafi wymienić zwierząt
transgenicznych mających zastosowanie
w biomedycynie i ksenotransplantologii
lub/i nie potrafi wymienić konsekwencji i ryzyka
związanego z ksenotransplantologią
oraz jej wad i zalet lub/i
Jest nieobecny na minimum 20%
godzin seminaryjnych.
Student potrafi wymienić zwierzęta
transgeniczne mające zastosowanie w biomedycynie i
ksenotransplantologii. Potrafi wymienić konsekwencje i
ryzyko związane z ksenotransplantologią oraz jej wady i zalety. Student jest obecny
na minimum 80% godzin
seminaryjnych.
Student potrafi wymienić
transgeniczne i ogólnie
scharakteryzować zwierzęta mające zastosowanie w biomedycynie i
ksenotransplantologii. Potrafi wymienić i
opisać konsekwencje i ryzyko związane z
ksenotransplantologią oraz jej wady i zalety. Student jest obecny
na minimum 80% godzin
seminaryjnych.
Student potrafi wymienić i szczegółowo
scharakteryzować zwierzęta transgeniczne mające zastosowanie w
biomedycynie i ksenotransplantologii.
Potrafi wymienić i szczegółowo opisać
konsekwencje i ryzyko związane z
ksenotransplantologią oraz jej wady i zalety. Student jest obecny
na minimum 80% godzin seminaryjnych.
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: VI
6. Nazwa modułu: Moduł biotechnologiczny Nazwa przedmiotu: Hodowla in vitro roślin
7. Status przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca przedmiot: Zakład Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej 41-200 Sosnowiec ul. Jedności 8 tel. 32 364 12 73 http://biotechnologia.sum.edu.pl/
9. Prowadzący przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Dr hab. Ilona Bednarek, [email protected]
10. Cel kształcenia: Przedstawienie podstaw teoretycznych i wykształcenie umiejętności i kompetencji w aspekcie pracy w laboratoriach doświadczalnych, umiejętność pracy z materiałem roślinnym, prowadzenie kultur In vitro roślin ich monitoring oraz analiza molekularna, posługiwanie się specjalistycznymi technikami ukierunkowanej organogenezy w hodowlach roślinnych, znajomość budowy bioreaktorów roślinnych i zasad prowadzenia kultur roślinnych w bioreaktorach, poznanie metod eliminowania patogenów z kultur roślinnych, przedstawienie zagadnień dotyczących roślin haploidalnych.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Treści programowe przedstawionego kursu bazują na wiedzy studentów zdobytej na kursach: biologia roślin, kultury tkankowe i komórkowe roślin i zwierząt, biologia komórki, biochemia, mikrobiologia ogólna z wirusologią oraz stanowią uzupełnienie materiału realizowanego na kursach: inżynieria bioprocesowa i biotechnologia molekularna. Student powinien wykazywać się wiedzą dotyczącą budowy roślin, zasad przygotowania, prowadzenia i kontroli hodowli roślin In vitro, powinien potrafić zarówno samodzielnie wykonać ćwiczenie na podstawie otrzymanej instrukcji jak i pracować w grupie.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył przedmiot:
Odniesienie do efektów
kształcenia dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Student potrafi zachować sterylne warunki podczas pracy z materiałem roślinnym pod
komorą laminarną.
K1_W22, K1_U11, K1_U25, K1_K06,
K1_K07
M1_W04,M1_U02, M1_U07, M1_K04
02
Student potrafi planować, prowadzić i kontrolować hodowlę roślinną. Potrafi
wybrać i przygotować pożywkę, opisać jej skład, przeprowadzić sterylizację materiału
roślinnego, przygotować eksplantat, prowadzić pasaż.
K1_W18,K1_W22, K1_U01, K1_U10, K1_U11, K1_U25, K1_U27, K1_K06,
K1_K07, K1_K13
M1_W03, 1_W04, M1_U01, M1_U02, M1_U07, M1_U08, M1_K04, M1_K07
03
Student zna zasady prowadzenia hodowli
roślinnych w bioreaktorach. Wykazuje znajomość podstawowych parametrów
fizyko-chemicznych oraz biochemicznych hodowli roślin w bioreaktorach. Potrafi
wskazać przykłady i zastosowanie metabolitów wtórnych wytwarzanych przez
rośliny wykorzystywanych w przemyśle farmaceutycznym.
K1_W07, K1_W18 K1_W25, K1_W34 K1_W35, K1_W36 K1_W44, K1_U06 K1_U12, K1_U36 K1_U41, K1_K13
M1_W01,M1_W03 M1_W05,M1_W10 M1_U01,M1_U02 M1_U10,M1_K07
04
Wykazuje znajomość roślinnych regulatorów wzrostu oraz posiada umiejętność przeprowadzenia organogenezy
z udziałem komórek roślinnych w celu otrzymania konkretnego organu lub kalusa.
K1_W18,K1_W22, K1_U01,K1_U10, K1_U25,K1_U27, K1_U43,K1_K06, K1_K07,K1_K13
M1_W03,M1_W04, M1_U01, M1_U07, M1_U08,M1_U12, M1_K04, M1_K07
05
Student zna sposoby testowania roślin w kierunku obecności specyficznych
patogenów oraz potrafi wykorzystać różne metody do uwalniania roślin od tych
patogenów.
K1_W18,K1_W22, K1_W29,K1_U01, K1_U08,K1_U10, K1_U11,K1_U25, K1_U27,K1_U30, K1_U43,K1_K06, K1_K07,K1_K13
M1_W03,M1_W04, M1_W07, M1_U01, M1_U02, M1_U07, M1_U08, M1_K04,
M1_K07
06
Student zna metody otrzymywania roślin haploidalnych na drodze androgenezy i
gynognezy oraz potrafi ocenić ploidalność otrzymanych komórek roślinnych
K1_W04,K1_W18, K1_U03, K1_U29, K1_U44, K1_K06,
K1_K07
M1_W01,M1_W03, M1_U01, M1_ U08, M1_
U12,M1_ K04,
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 x
02 X
03 X
04 X
05 X
06 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
Łącznie
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1 Regulatory wzrostu i rozwoju roślin. 3
S2 Organogeneza (totipotencja, kompetencja, różnicowanie, organogeneza bezpośrednia, pośrednia, embriogeneza somatyczna,
3
S3
Kultury roślinne w bioreaktorach (zawiesinowa, korzeniowa, transformowana). Biosynteza metabolitów wtórnych wytwarzanych przez rośliny a wykorzystywanych w przemyśle farmaceutycznym.
3
S4 Uwalnianie roślin od patogenów- chemoterapia, termoterapia, testowanie roślin uwolnionych od wirusów.
3
S5 Rośliny haploidalne; androgeneza, gynogeneza, ocena stopnia ploidalności.
3
S6 Przygotowanie płynnej i stałej pożywki MS z różnymi stężeniami auksyn i cytokinin. Sterylizacja materiału roślinnego (korzeń marchwi). Założenie hodowli in vitro kalusa marchwi.
3
S7 Założenie hodowli in vitro z liści tytoniu. Organogeneza in vitro z liści tytoniu.
3
S8 Budowa bioreaktorów do hodowli roślin. 3
S9
Omówienie wyników organogenezy. Wpływ auksyn i cytokinin na indukcję kalusa i proces organogenezy na fragmentach liści tytoniu. Ocena przeżywalności, regeneracji oraz rodzaju zmian fenotypowych mutantów fiołka afrykańskiego. Określenie markerów molekularnych.
3
S10 Metody eliminowania wirusów - kultura in vitro merystemów wierzchołkowych, chemoterapia in vitro, termoterapia in vitro, krioterapia.
3
Łącznie 30
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład
15.2. Seminarium Prelekcja, pokaz, dyskusja problemowa,
15.3. Ćwiczenie
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 Pisemny test zaliczeniowy weryfikujący wiedzę i umiejętności; zaliczenie praktyczne
Co najmniej 60% poprawnych odpowiedzi w teście; poprawne wykonanie zadania praktycznego.
02
Pisemny test zaliczeniowy weryfikujący wiedzę i umiejętności; kolokwia lub odpowiedź ustna w trakcie ćwiczeń; zaliczenie ćwiczenia laboratoryjnego na podstawie wykonania praktycznego i przygotowania sprawozdania.
Co najmniej 60% poprawnych odpowiedzi w teście i kolokwiach; prawidłowo wykonane sprawozdanie z ćwiczeń praktycznych.
03
Pisemny test zaliczeniowy weryfikujący wiedzę i umiejętności, kolokwia lub odpowiedź ustna w trakcie ćwiczeń, kolokwium pisemne w trakcie seminarium.
Co najmniej 60% poprawnych odpowiedzi w teście i kolokwiach.
04
Pisemny test zaliczeniowy weryfikujący wiedzę i umiejętności; kolokwia lub odpowiedź ustna w trakcie ćwiczeń; zaliczenie ćwiczenia laboratoryjnego na podstawie wykonania praktycznego i przygotowania sprawozdania.
Co najmniej 60% poprawnych odpowiedzi w teście i kolokwiach; prawidłowo wykonane sprawozdanie z ćwiczeń praktycznych.
05
Pisemny test zaliczeniowy weryfikujący wiedzę i umiejętności, przeprowadzenie badań i prezentacja ich wyników w formie sprawozdania.
Co najmniej 60% poprawnych odpowiedzi w teście i kolokwiach; prawidłowo wykonane sprawozdanie z ćwiczeń praktycznych.
06 Pisemny test zaliczeniowy weryfikujący wiedzę Co najmniej 60% poprawnych odpowiedzi w teście
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w wykładach 0 h
udział w seminariach 30 h
obecność na egzaminie pisemnym 2 h
konsultacje 5 h
łącznie 37 h
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminarium 13 h
przygotowanie do kolokwium z seminariów 10 h
przygotowanie do zaliczenia z przedmiotu 10 h
łącznie 33 h
Łącznie 70 h
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
1
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
1
19. Literatura
19.1. Podstawowa 5. Red. Bednarek I.: Inżynieria genetyczna i terapia genowa. Zagadnienia podstawowe i aspekty praktyczne.
SUM Katowice 2008 6. Malepszy S. Biotechnologia roślin. Wydawnictwo Naukowe PWN. Warszawa 2004.
19.2. Uzupełniająca 1.Victor M.Loyola-Vargas, Felipe Vazquez-Flota.: Plant Cell Culture Protocols. Humana Press. Totowa, New Jersey 2006 2. Woźny A., Przybył K.: Komórki roślinne w warunkach stresu. Komórki in vitro. Wydawnictwo Naukowe UAM. Poznań 2004. 3. Zenkteler M. Hodowla komórek i tkanek roślinnych. Wydawnictwo Naukowe PWN. 1984.
20. Inne przydatne informacje o przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna – 20 osób
20.2. Materiały do zajęć Wybrane materiały w formie elektronicznej umieszczane są na stronie internetowej Zakładu (poniżej)
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
Ćwiczenia i seminaria: sala ćwiczeń Zakładu Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Zakład Biotechnologii i Inżynierii Genetycznej Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne Strona internetowa Zakładu: biotechnologia.sum.edu.pl (zakładka: studenci)
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01
Student nie zna podstawowych zasad
bezpiecznej pracy obowiązujących w
laboratorium biologicznym.
Student zna podstawowe zasady bezpiecznej pracy z
materiałem biologicznym, ma
jednak trudności z ich zastosowaniem w
praktyce.
Student szczegółowo zna zasady bezpiecznej
pracy z materiałem biologicznym; popełnia
niewielkie błędy związane z
zachowaniem warunków sterylnych
podczas pracy.
Student pracuje z materiałem
biologicznym z zachowaniem zasad
higieny, bezpieczeństwa i warunków sterylnych;
jest w stanie przewidzieć i zapobiec
ewentualnym zagrożeniom związanym
z pracą z materiałem biologicznym.
Efekt 02
Student nie zna podstawowych
składników i nie potrafi wykonać pożywki do
hodowli roślin In vitro;
Student posiada wiedzę dotyczącą składników pożywek do hodowli roślin In vitro, potrafi
wybrać i wykonać
Student potrafi wymienić i
scharakteryzować składniki pożywki do
hodowli roślin In vitro,
Student potrafi wymienić i
scharakteryzować funkcje poszczególnych składników pożywek do
popełnia błędy podczas sterylizacji i
preparowania eksplantatów i/lub nie
przygotowuje sprawozdania bądź
zawiera ono braki lub błędy istotnie
wpływające na możliwość interpretacji
wyników doświadczenia.
podłożę, popełnia drobne błędy podczas
zakładania hodowli roślinnej; ma trudności z
prawidłowym przeprowadzeniem
sterylizacji materiału roślinnego oraz
doborem warunków prowadzenia hodowli.
bezbłędnie wykonuje pożywkę; zna
teoretycznie zasady prowadzenia sterylizacji
materiału roślinnego jednak popełnia niewielkie błędy
podczas jej wykonywania; potrafi
wypreparować eksplantat oraz
pasażować hodowlę.
hodowli roślin In vitro, bezbłędnie wykonuje
pożywkę (potrafi przeliczać stężenia
składników), samodzielnie zakłada i prowadzi hodowlę In
vitro roślin; zna zasady doboru rośliny
matecznej i rodzaju tkanki pobrania
eksplantatu, prawidłowo
przeprowadza proces wypreparowanie
eksplantatu, sterylizacji materiału biologicznego
oraz dobiera warunki prowadzenia hodowli.
Efekt 03
Student nie potrafi omówić budowy
bioreaktora I nie zna zalet
zastosowania hodowli roślin w bioreaktorach
oraz typów kultur bioreaktorowych
I nie zna czynników wpływających na przebieg hodowli
roślinnych w bioreaktorach
I nie potrafi podać przykładów
metabolitów wtórnych wytwarzanych przez
rośliny a wykorzystywanych w
przemyśle farmaceutycznym
Student potrafi omówić podstawową budowę bioreaktora, potrafi
wymienić zalety zastosowania hodowli roślin w bioreaktorach
oraz typy kultur bioreaktorowych
i zna czynniki wpływające na przebieg
hodowli roślinnych w bioreaktorach
i/lub potrafi podać przykłady metabolitów wtórnych
wytwarzanych przez rośliny a
wykorzystywanych w przemyśle
farmaceutycznym
Student potrafi szczegółowo omówić budowę bioreaktora
I Bardziej szczegółowe potrafi opisać zalety
zastosowania hodowli roślin w bioreaktorach
oraz typy kultur bioreaktorowych
i/lub zna czynniki
wpływających na przebieg hodowli
roślinnych w bioreaktorach
i/lub potrafi podać przykłady metabolitów wtórnych
wytwarzanych przez rośliny a
wykorzystywanych w przemyśle
farmaceutycznym
Student potrafi szczegółowo omówić budowę bioreaktora
i szczegółowo opisuje zalety zastosowania
hodowli roślin w bioreaktorach oraz typy kultur bioreaktorowych
i zna oraz dokładnie charakteryzuje czynniki wpływające na przebieg
hodowli roślinnych w bioreaktorach i potrafi podać
przykłady metabolitów wtórnych wytwarzanych
przez rośliny a wykorzystywanych w
przemyśle farmaceutycznym
Efekt 04
Student nie zna podstawowych
terminów związanych z procesem organogenezy
i/lub nie potrafi wymienić
podstawowych regulatorów wzrostu
i/lub
Posługuje się podstawowymi
pojęciami związanymi z organogenezą.
Wykazuje ogólną znajomość wszystkich
omawianych regulatorów wzrostu. Potrafi wyhodować
Opisuje pojęcia związane z
organogenezą. i/lub
wykazuje szczegółową znajomość wszystkich
omawianych regulatorów wzrostu. Potrafi wyhodować
Bezbłędnie posługuje się pojęciami związanymi z
organogenezą. Wykazuje szczegółową znajomość wszystkich
omawianych regulatorów wzrostu. Potrafi wyhodować
nie przygotowuje sprawozdania bądź
zawiera ono braki lub błędy istotnie
wpływające na możliwość interpretacji
wyników doświadczenia.
dany organ roślinny i tkankę kalusową.
Przygotowuje sprawozdanie z
przeprowadzonego doświadczenia.
dany organ roślinny i tkankę kalusową.
Bezbłędnie przygotowuje
sprawozdanie z przeprowadzonego
doświadczenia.
dany organ roślinny i tkankę kalusową.
Bezbłędnie przygotowuje
sprawozdanie z przeprowadzonego
doświadczenia.
Efekt 05
Student nie potrafi wymienić metod
eliminowania patogenów z kultur
roślinnych i/lub nie przygotowuje
sprawozdania bądź zawiera ono braki lub
błędy istotnie wpływające na
możliwość interpretacji wyników
doświadczenia.
Student potrafi wymienić hipotezy wyjaśniające brak
wirusów w tkankach twórczych, zna rożne metody eliminowania wirusów oraz sposoby
testowania roślin w kierunku obecności
wirusów. Przygotowuje sprawozdanie z
przeprowadzonego doświadczenia.
Student potrafi wymienić i
scharakteryzować hipotezy wyjaśniające
brak wirusów w tkankach twórczych
i/lub zna, szczegółowo
opisuje oraz potrafi zastosować rożne
metody eliminowania wirusów i/lub
zna, szczegółowo opisuje oraz potrafi zastosować rożne
sposoby testowania roślin w kierunku
obecności wirusów. Potrafi przygotować
sprawozdanie z przeprowadzonego
doświadczenia.
Student potrafi wymienić i
scharakteryzować hipotezy wyjaśniające
brak wirusów w tkankach twórczych,
zna, szczegółowo opisuje oraz potrafi zastosować rożne
metody eliminowania wirusów oraz zna,
szczegółowo opisuje oraz potrafi zastosować
rożne sposoby testowania roślin w kierunku obecności
wirusów. Bezbłędnie przygotowuje
sprawozdanie z przeprowadzonego
doświadczenia.
Efekt 06
Student myli podstawowe pojęcia
związane z otrzymywaniem roślin haploidalnych i nie zna
metod haploidyzacji roslin. Nie potrafi ocenić
ploidalności roślin.
Student potrafi wyjaśnić pojęcia: haploid,
podwojony haploid, dihaploid oraz wymienić
metody uzyskiwania roślin haploidalnych.
Student potrafi wyjaśnić pojęcia: haploid,
podwojony haploid, dihaploid oraz potrafi
ogólnie scharakteryzować
metody uzyskiwania roślin haploidalnych i
ich oceny pod względem ploidalności.
Student potrafi wyjaśnić pojęcia: haploid,
podwojony haploid, di haploid. Student potrafi
szczegółowo scharakteryzować pojęcia związane z
otrzymywaniem roślin haploidalnych, potrafi
omówić bezbłędnie proces gynogenezy i androgenezy, zna i
rozumie metody oceny stopnia ploidalności
roślin.
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: VI
6. Nazwa modułu: Moduł molekularno-biochemiczny Nazwa przedmiotu: Analiza działania kancerogenów w układach biologicznych
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Zakład Biologii Komórki 41-200 Sosnowiec, ul. Jedności 8 http://biologia-komorki.sum.edu.pl/
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Dr hab. n. med. Małgorzata Latocha, [email protected]
10. Cel kształcenia: Poznanie podstaw przyczynowo-skutowych nowotworów indukowanych oraz możliwości zapobiegania i obniżenia ryzyka zachorowania na ten rodzaj nowotworów ze szczególnym uwzględnieniem kancerogenów chemicznych i fizycznych stanowiących zanieczyszczenia naturalnego środowiska człowieka oraz występujących w miejscu pracy. Zapoznanie się z genotoksycznym działaniem oraz charakterystyką związków mutagennych i rakotwórczych występujących w żywności i używkach. Poznanie naturalnych substancji przeciwnowotworowych oraz zasad chemioprewencji.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Wiedza z zakresu podstaw biologii komórki, genetyki oraz chemii organicznej, umiejętność prowadzenia analiz laboratoryjnych
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Potrafi wymienić, podzielić na grupy, scharakteryzować
czynniki genotoksyczne oraz kancerogenne
z uwzględnieniem ich roli w transformacji nowotworowej.
K1_W06 K1_W07 K1_W20
M1_W01 M1_W04
02 Zna możliwości detekcji czynników kancerogennych i
sposoby, dzięki którym można zmniejszyć narażenie
człowieka na ich działanie.
K1_W07 K1_W12 K1_W22 K1_W28
M1_W01 M1_W02 M1_W04 M1_W06
03 Posiada umiejętność wyszukiwania materiałów (internet,
publikacje) dotyczących wpływu czynników
genotoksycznych i kancerogennych na podstawowe
procesy komórkowe oraz przygotowania prezentacji
dotyczących najnowszych badań z zakresu detekcji
kancerogenów.
K1_U21 K1_U44 K1_U49
M1_U06 M1_U12 M1_U14
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
03 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
Łącznie -
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1 Klasyfikacja czynników nowotworowych 2
S2 Czynniki modyfikujące strukturę DNA - mutageny i kancerogeny. 2
S3 Molekularne mechanizmy chemicznej kancerogenezy. Metabolizm kancerogenów.
2
S4 Alternatywne mechanizmy chemicznej kancerogenezy. 2
S5 Enzymy I i II fazy biotransformacji a chemio prewencja nowotworów 2
S6 Znaczenie polimorfizmów genów naprawy DNA w kształtowaniu indywidualnego ryzyka wystąpienia nowotworów.
2
S7 Wpływ predyspozycji genetycznych na osobnicze zróżnicowanie odpowiedzi na leczenie u pacjentów z chorobą nowotworową.
2
S8 Narażenie na substancje o działaniu kancerogennym – biomarkery narażenia. Płyny biologiczne jako źródło informacji o narażeniu na kancerogeny.
2
S9 Wpływ substancji chemicznych o działaniu przeciwnowotworowym i czynników rakotwórczych na przeżywalność komórek prawidłowych i nowotworowych oraz ich zdolności proliferacyjne.
2
S10 Skutki stresu oksydacyjnego w komórkach prawidłowych i nowotworowych. Udział mutacji mitochondrialnego DNA w rozwoju nowotworów.
2
S11 Kancerogeny środowiskowe (zawodowe i pozazawodowe). Kancerogeny w miejscu pracy a nowotwory indukowane.
2
S12 Mutageny i kancerogeny w żywności i używkach – mykotoksyny, pestycydy, dioksyny, wielopierścieniowe węglowodory aromatyczne, nitrozo aminy.
2
S13 Alkohol jako czynnik ryzyka w chorobie nowotworowej. Nowotwory alkoholozależne jamy ustnej i gardła, przełyku, krtani, wątroby.
2
S14 Palenie albo zdrowie. Nowotwory tytoniozależne.
S15 Żywieniowa profilaktyka chorób nowotworowych. Dieta antynowotworowa i zalecenia dietetyczne obniżające ryzyko nowotworów.
2
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: Ćwiczenia -
Łącznie -
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład -
15.2. Seminaria Metody aktywizujące, dyskusja dydaktyczna, prelekcja
15.3. Ćwiczenia -
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 Udział w dyskusji, ocena z kolokwium
-dyskusja-max. 40%p możliwych do uzyskania w ciągu semestru,
-kolokwium 60% (zdany powyżej 45% poprawnych odpowiedzi)
02
Udział w dyskusji, ocena z kolokwium
-dyskusja-max. 40%p możliwych do uzyskania w ciągu semestru, -kolokwium 60% (zdany powyżej 45% poprawnych odpowiedzi)
03 Umiejętność wyszukiwania materiałów (internet,
publikacje) dotyczących wybranych zagadnień z
zakresu fotobiologii i ich omówienia -
przedstawienia w dostępnej formie kolegom i
koleżankom
- przedstawienie materiału z publikacji naukowych -max. 10%p możliwych do uzyskania w ciągu semestru
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w wykładach -
udział w seminariach 30
udział w ćwiczeniach -
obecność na egzaminie -
konsultacje 15
łącznie 45
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminarium 25
przygotowanie do ćwiczeń 5
przygotowanie do sprawdzianów pisemnych z ćwiczeń 5
przygotowanie do prezentacji publikacji -
przygotowanie do egzaminu -
łącznie 35
Łącznie 80
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
2
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
-
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Ball S.: Naturalne substancje przeciwnowotworowe. Medyk 2000. 2. Rydzyński K.: Uwarunkowania środowiskowe i genetyczne raka płuca. Instytut Medycyny Pracy
2000. 3. Kordek R., Jassem J., Krzakowski M., Jeziorski A.: Onkologia. Podręcznik dla studentów i lekarzy. VIA
MEDICA 2006. 4. Pawlęga J.:Zarys Onkologii. Podręcznik dla studentów i lekarzy. Wydawnictwo Uniwersytetu
Jagiellońskiego 2002. 5. Kułakowski A., Skowrońska-Gardas A.: Onkologia. Podręcznik dla studentów medycyny. PZWL 2003. 6. Wieczorek-Chełmińska Z.: Żywienie w chorobach nowotworowych. PZWL 2006. 7. Ball S.: Papieros na ławie oskarżonych - czyli o nałogu palenia bez retuszu. Medyk 1998. 8. Holford P.: Rakowi powiedz nie. Filar 2006. 9. Alberts B.: Podstawy biologii komórki. Wprowadzenie do biologii molekularnej. PWN 2007.
19.2. Uzupełniająca 1. Weinberg R.A.: The biology of cancer. T&Finforma 2007. 2. Madej J.A.: Podstawy cytopatologii. Urban&Partner 2003. 3. Passarge E.: Genetyka. Ilustrowany przewodnik. PZWL 2004.
4. dostępna w bibliotece lub drogą internetową literatura (publikacje) na temat kancerogenów chemicznych i fizycznych oraz substancji o działaniu przeciwnowotworowym.
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna - 20 osób
20.2. Materiały do zajęć Pokaz multimedialny, pokaz filmowy, bazy internetowe, podręczniki, ideogramy, zadania problemowe.
20.3. Miejsce odbywania się zajęć sala 4,27 w budynku B Wydziału Farmaceutycznego z Oddziałem Medycyny Laboratoryjnej, 41-200 Sosnowiec, ul. Jedności 8 wg planu podanego przez Dziekanat
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Zakład Biologii Komórki, Wydziału 41-200 Sosnowiec, ul. Jedności 8 (p.303-305) 1 godzina raz w tygodniu Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01 Brak elementarnej wiedzy na temat czynników genotoksycznych i kancerogennych oraz ich roli w transformacji nowotworowej.
Elementarna wiedza
i umiejętność
charakterystyki
zmian zachodzących
w materiale
genetycznym
komórki pod
wpływem czynników
genotoksycznych
i kancerogennych.
Podstawowa wiedza i umiejętności opisania i scharakteryzowania zmian zachodzących w materiale genetycznym komórki oraz zmian epigenetycznych pod wpływem czynników genotoksycznych i kancerogennych. Aktywny udział w dyskusji.
Szeroka wiedza na temat zmian zachodzących w materiale genetycznym komórki oraz zmian epigenetycznych pod wpływem czynników genotoksycznych i kancerogennych. Umiejętności przedstawiania skutków zaburzeń genetycznych i epigenetycznych wywołanych czynnikami kancerogennymi. Duża aktywność studenta na zajęciach.
Efekt 02 Nie posiada wymaganej wiedzy na temat możliwości detekcji czynników kancerogennych i sposoby, dzięki którym można zmniejszyć narażenie człowieka na ich działanie.
Posiada podstawowe informacje na temat możliwości detekcji czynników kancerogennych i sposoby, dzięki którym można zmniejszyć narażenie człowieka na ich działanie.
Ugruntowana wiedza dotycząca możliwości detekcji i oceny występowania, lub zagrożenia czynnikami kancerogennemi i znajomość sposobów dzięki, którym można zmniejszyć narażenie
. Ugruntowana wiedza dotycząca możliwości detekcji i oceny występowania, lub zagrożenia czynnikami kancerogennemi i znajomość sposobów dzięki, którym można zmniejszyć narażenie
człowieka na ich działanie. Aktywny udział w dyskusji.
człowieka na ich działanie. Duża aktywność studenta na zajęciach.
Efekt 03 Nie przygotowanie prezentacji lub prezentacja materiału z publikacji bez zrozumienia w odbiorze, która nie daje możliwości poszerzenia lub ugruntowania wiedzy przez kolegów.
Przygotowanie prezentacji z zakresu materiału znadującego się w publikacji.
Staranne przygotowanie się z zakresu materiału znadującego się w publikacji, właściwy wybór informacji, dobrze przygotowany przekaz, umiejętne przekaznie istoty publikacji ze zrozumieniem tematu.
Staranne przygotowanie się z zakresu materiału znadującego się w publikacji, wybór najważniejszych wiadomości, poszerzenie prezentacji o informacje dodatkowe, dobrze przygotowany przekaz, przygotowanie materiałów pomocniczych do prezentacji, umiejętne przekaznie istoty publikacji .
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo
dobry
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: VI
6. Nazwa modułu: Moduł molekularno-biochemiczny Nazwa przedmiotu: Fotobiologia i fotomedycyna
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Zakład Biologii Komórki, 41-200 Sosnowiec, ul.Jedności 8
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Dr hab.n.med. Małgorzata Latocha, [email protected]
10. Cel kształcenia: Zapoznanie studentów z molekularnymi skutkami działania światła na organizmy żywe i możliwością wykorzystania różnych zakresów mocy i długości fal w biologii i medycynie. Wykazanie wpływu wybranych składników pokarmowych, leków kosmetyków na przebieg procesu fotodynamicznego. Wskazanie sposobów modyfikacji oraz kierunków rozwoju metod fotodynamicznych.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: wiedza z zakresu podstaw biologii komórki
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01
Posiada wiedzę dotyczącą molekularnych podstaw procesów związanych z działaniem światła na organizmy żywe i wykorzystania światła w medycynie: diagnostyka i terapia (biostymulacyjna, nieinwazyjna i inwazyjna)
K1_W07 K1_W09
M1_W01 M1_W01
02 Zna podstawowe mechanizmy przystosowawcze i obronne przed szkodliwym promieniowaniem świetlnym, oraz zagadnieania związane z ochroną przed promieniowaniem.
K1_W29 K1_W12
M1_W07 M1_W02
03 Posiada wiedzę dotyczącą możliwości zastosowania metod biotechnologicznych do poprawy efektywności reakcji fotodynamicznej
K1_W33 K1_W12
M1_W09 M1_W02
04 Posiada umiejętności interpretacji informacji zawartych w publikacjach naukowych, umiejętność samodzielnego przygotowania prezentacji i prowadzenia dyskusji, umiejętność wyszukiwania materiałów (internet, publikacje) dotyczących tematyki omawianej na zajęciach oraz przygotowania prezentacji
K1_U21 K1_U44 K1_U45 K1_U47 K1_49
M1_U06 M1_U12 M1_U12 M1_U13 M1_U14 M1_U14
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 x
02 x
03 x
04 x
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
Łącznie -
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1 Zastosowanie światła UV i VIS w biologii i medycynie 2
S2 Podczerwień i jej wykorzystanie w diagnostyce i terapii 2
S3 Biostymulacja światłem – molekularne podstawy wykorzystania światła o różnych długościach fali
2
S4 Podstawy teoretyczne diagnostyki i terapii fotodynamicznej, oddziaływanie promieniowania laserowego na tkanki, efekty molekularne i komórkowe PDT. Zalety i wady PDT i PDD
2
S5 Efekty narządowe i tkankowe metod fotodynamicznych stosowanych w medycynie
2
S6
Źródła światła stosowane w metodach fotodymicznych, postępowanie przy pracy z laserami oraz możliwe zagrożenia. Substancje fotouczulające - wymagania, rodzaje i działanie na komórki, naturalne fotouczulacze i ich zastosowanie
2
S7 Kliniczne zastosowanie PDT- nowotworowe i nienowotworowe, możliwości diagnostyki fotodynamicznej i sposoby jej przeprowadzania
2
S8 Perspektywy rozwoju metod fotodynamicznych i najnowsze osiągnięcia z zakresu metod fotodynamicznych
1
S9 Komórkowe i molekularne efekty biostymulacji światłem 3
S10 Komórkowe i molekularne efekty terapii fotodynamicznej 3
S11 Zależność efektów PDT od stosowanego fotouczulacza. Sposoby modyfikacji efektów metody.
3
S12 Procesy wolnorodnikowe i ich ocena w terapii i diagnostyce fotodynamicznej
3
S13 Wpływ stosowanych niektórych składników kosmetyków, suplementów diety, leków na efekt fotodynamiczny
3
Łącznie 30
14.3. Forma zajęć: Ćwiczenia -
Łącznie -
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład -
15.2. Seminaria Metody aktywizujące, dyskusja dydaktyczna
15.3. Ćwiczenia
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01
Aktywność na zajęciach praktycznych, udział w dyskusji, ocena z kolokwium
-zaangażowanie na ćwiczeniach -10% możliwych do uzyskania w ciągu semestru, dyskusja-max. 20%p możliwych do uzyskania w ciągu semestru, -przygotowanie opracowania i prezentacji wskazanej publikacji dotyczącej metod fotodynamicznych-10% możliwych do uzyskania w ciągu semestru,
-kolokwium 60% (zdany powyżej 45% poprawnych odpowiedzi)
02
Aktywność na zajęciach praktycznych, udział w dyskusji, ocena z kolokwium
-zaangażowanie na ćwiczeniach -10% możliwych do uzyskania w ciągu semestru, dyskusja-max. 20%p możliwych do uzyskania w ciągu semestru, -przygotowanie opracowania i prezentacji wskazanej publikacji dotyczącej metod fotodynamicznych-10% możliwych do uzyskania w ciągu semestru, -kolokwium 60% (zdany powyżej 45% poprawnych odpowiedzi)
03
Aktywność na zajęciach praktycznych, udział w dyskusji, ocena z kolokwium
-zaangażowanie na ćwiczeniach -10% możliwych do uzyskania w ciągu semestru, dyskusja-max. 20%p możliwych do uzyskania w ciągu semestru, -przygotowanie opracowania i prezentacji wskazanej publikacji dotyczącej metod fotodynamicznych-10% możliwych do uzyskania w ciągu semestru, -kolokwium 60% (zdany powyżej 45% poprawnych odpowiedzi)
04 Umiejętność wyszukiwania materiałów (internet,
publikacje) dotyczących wybranych zagadnień z
zakresu fotobiologii i ich omówienia -
przedstawienia w dostępnej formie kolegom i
koleżankom
- przedstawienie materiału z publikacji naukowych -max. 10%p możliwych do uzyskania w ciągu semestru
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w wykładach -
udział w seminariach 30
udział w ćwiczeniach
obecność na egzaminie -
konsultacje 15
łącznie 45
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminarium 25
przygotowanie do ćwiczeń 5
przygotowanie do kolokwiów 5
przygotowanie do prezentacji publikacji -
przygotowanie do egzaminu -
łącznie 35
Łącznie 80
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
2
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
-
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1.Podbielska H., A. Sieroń, W.Stręk "Diagnostyka i terapia fotodynamiczna" Urban&Partner Wrocław 2004 2.Sieroń A., G.Cieslar, M.Adamek, A.Laitl-Kobierska, M.Szyguła, A.Krawczyk-Krupka "Zarys fotodynamicznej diagnostyki i terapii nowotworów" a-medica press Bielsko-Biała 1997 3.Hrynkiewicz A.i Rokita E."Fizyczne metody diagnostyki medycznej i terapii"PWN 2000 4.Mika, T.W.Kasprzak "Fizykoterapia" PZWL 2001
19.2. Uzupełniająca wybrane publikcje dotyczące omawianych zagadnień
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup 20 osób w grupie seminaryjnej
20.2. Materiały do zajęć Pokaz multimedialny
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Zakład Biologii Komórki Budynek kampusu B, sala 4.27 (IV piętro) 41-200 Sosnowiec ul.Jedności 8 41-200 Sosnowiec
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Zakład Biologii Komórki Budynek kampusu A, p.303-305 41-200 Sosnowiec ul.Jedności 8 1 godzina raz w tygodniu Godziny konsultacyjne ustalone przez studentów z prowadzącym zajęcia
20.5. Inne
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01
Brak elementarnej wiedzy i na temat metod fotodynamicznych i możliwości ich wykorzystania zarówno w praktyce klinicznej .
Elementarna wiedza
dotycząca podstaw
metod
fotodynamicznych i
możliwości ich
wykorzystania w
praktyce klinicznej
(diagnostyka i
terapia).
Wiedza na temat podstaw metod fotodynamicznych i możliwości ich wykorzystania w praktyce klinicznej (diagnostyka i terapia) jak i w gabinetach medycyny estetycznej. Udział w dyskusji
Ugruntowana wiedza na temat podstaw metod fotodynamicznych i możliwości ich wykorzystania zarówno w praktyce klinicznej (diagnostyka i terapia) jak i w gabinetach medycyny estetycznej. Duża aktywność studenta na zajęciach
Efekt 02
Brak wiedzy na temat zagrożeń wynikających z przyjęcia
Elementarna wiedza na temat zagrożeń wynikających z przyjęcia
Wiedza na temat zagrożeń wynikających z przyjęcia
Ugruntowana wiedza na temat zagrożeń wynikających z
nieprawidłowych warunków metody oraz wpływu stosowanych suplementów diety i niektórych składników kosmetyków na efekt fotodynamiczny.
nieprawidłowych warunków metody oraz wpływu stosowanych suplementów diety i niektórych składników kosmetyków na efekt fotodynamiczny, wiedza dotycząca zagrożeń metody i przepisów BHP
nieprawidłowych warunków metody oraz wpływu stosowanych suplementów diety i niektórych składników kosmetyków na efekt fotodynamiczny, jak i mechanizmów przystosowawczych; wiedza dotycząca zagrożeń metody i przepisów BHP Udział w dyskusji
przyjęcia nieprawidłowych warunków metody oraz wpływu stosowanych suplementów diety i niektórych składników kosmetyków na efekt fotodynamiczny, jak i mechanizmów przystosowawczych; wiedza dotycząca zagrożeń metody i przepisów BHP. Duża aktywność studenta na zajęciach
Efekt 03
Brak wiedzy dotyczącej możliwości zastosowania metod biotechnologicznych do poprawy efektywności reakcji fotodynamicznej
Częściowa wiedza dotycząca możliwości zastosowania metod biotechnologicznych do poprawy efektywności reakcji fotodynamicznej
Aktualne wiedza dotycząca możliwości zastosowania metod biotechnologicznych do poprawy efektywności reakcji fotodynamicznej Udział w dyskusji
Aktualna i szeroka wiedza dotycząca możliwości zastosowania metod biotechnologicznych do poprawy efektywności reakcji fotodynamicznej Duża aktywność studenta na zajęciach
Efekt 04
Nie przygotowanie prezentacji lub prezentacja materiału z publikacji bez zrozumienia w odbiorze, która nie daje możliwości poszerzenia lub ugruntowania wiedzy przez kolegów.
Przygotowanie prezentacji z zakresu materiału znadującego się w publikacji.
Staranne przygotowanie się z zakresu materiału znadującego się w publikacji, właściwy wybór informacji, dobrze przygotowany przekaz, umiejętne przekaznie istoty publikacji ze zrozumieniem tematu.
Staranne przygotowanie się z zakresu materiału znadującego się w publikacji, wybór najważniejszych wiadomości, poszerzenie prezentacji o informacje dodatkowe, dobrze przygotowany przekaz, przygotowanie materiałów pomocniczych do prezentacji, umiejętne przekaznie istoty publikacji .
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: studia stacjonarne
4. Rok: II 5. Semestr:
6. Nazwa modułu: Moduł molekularno-biochemiczny Nazwa przedmiotu: Nutrigenomika
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Biologii Molekularnej, ul. Jedności 8 , 41-206 Sosnowiec, e-mail: [email protected], http://www.biolmol.sum.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Prof. dr hab. n. med. Urszula Mazurek, [email protected]
10. Cel kształcenia: Poznanie wpływu bioaktywnych składników diety na ekspresję genów człowieka i mechanizmów działania
bioaktywnych składników diety na poziomie molekularnym, oraz zapoznanie studentów z zasadami
opracowywania tzw. diety spersonalizowanej czyli diety przeznaczonej dla ściśle określonej osoby, opracowanej
na podstawie analizy jej genów (np. polimorfizmów SNP które wzmacniają lub osłabiają wpływ bioaktywnych
związków na ekspresję genów) lub analizy składników pokarmowych, które wiążą się z receptorami regulują proces
transkrypcji lub modulują procesy epigenetyczne, tzn. zmieniają profil metylacji DNA lub modyfikacji histonów.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Biologii molekularna-ej, biologii komórki i biochemii
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Zna przykłady i biochemiczne mechanizmy działania odżywczych substancji aktywnych na komórki. Wykazuje zrozumienie złożonych zasad przepływu informacji genetycznej i regulacji ekspresji genów w organizmie człowieka
K2_W01 K2_W04 K2_W07 K2_W15
M2_Wo1 M2_W02 M2_W05
02 Potrafi przedstawić wpływ działania substancji odżywczych w różnych jednostkacha chorobowych
K2_W17 M2_W06
03 Zna specjalistyczne metody badania genomu, transkryptomu i proteomu , rozumie ich wykorzystanie w nutrigenomice
K2_W08 K2_K07
M2_W03 M2_K05
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
03 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
W1
Łącznie
14.2. Forma zajęć: Seminaria
S1 Zależność między dietą a genomem. Polimorfizm genów a aktywne substancje odżywcze
1
S2
Nutrigenetyka i nutrigenomika a leczenie otyłości i chorób
towarzyszących. Odpowiednie odżywianie w zapobieganiu lub
łagodzeniu przebiegu określonych chorób 2
S3 Wpływ wybranych substancji czynnych na ekspresję genów (np. polifenole zielonej herbaty, kwasy tłuszczowe PUFA, sterole, flawonoidy)
2
S4 Molekularne mechanizmy regulacji długowieczności a liczenie kalorii 4
S5 Wpływ składników diety na epigenetyczną regulację ekspresji genów 2
S6
Wpływ bioaktywnych składników diety na aktywność receptorów
jądrowych i regulację transkrypcji. Wpływ bioaktywnych składników
diety na szlaki sygnałowe 2
S7 Wpływ bioaktywnych składników diety na efektywność procesów
naprawy DNA Aktywne substancje odżywcze w prewencji raka 2
S8 Perspektywy żywienia zindywidualizowanego 2
S9 polimorfizm M235T genu angiotensynogenu a skuteczność reakcji na dietę bogatą w błonnik, w relacji do ciśnienia tętniczego krwi
5
S10 Interakcja diety zawierającej dawki kofeiny przekraczającej300 mg/dzień z polimorfizmem i homozygotycznością genu VDR a utratą masy kości
5
S11 Optymalizacja ilości warzyw w diecie w profilaktyce raka w zależności od mutacji (np. delecja w GTSM1), w genach metabolizmu ksenobiotyków
5
Łącznie 30
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Seminarium klasyczna metoda problemowa, metody aktywizujące
15.2. Ćwiczenia Metody przypadku, ćwicz laboratoryjne
15.3. …
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Warunki zaliczenia
01 Kolokwium cząstkowe – test wyboru, uzupełnienia, pytania otwarte
Zaliczenie na ocenę 02
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 30
Udział w zaliczeniu 5
konsultacje 5
Łącznie 40
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminarium 20
Przygotowanie do kolokwium 10
Przygotowanie do zaliczenia 10
Łącznie 40
Łącznie 80
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
2
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1 Gawęcki J., Roszkowski W. Żywienie człowieka a zdrowie publiczne. Wydawnictwo Naukowe PWN
2009
2.Włodzimierz Grajka. Przeciwutleniacze w żywności Aspekty zdrowotne, technologiczne, molekularne i
analityczne 2007 rok ISBN: 978-83-204-3277-0
3.Sergey Karpow. Zdrowe odżywianie i jego sekrety ISBN: 978-83-7582-298-4 Wydanie 3, 2008
4.Ciborowska H, Rudnicka A.: Dietetyka. Żywienie zdrowego i chorego człowieka. Wydawnictwo
Lekarskie PZWL, Warszawa 2007
19.2. Uzupełniająca 1. literatura naukowa dostępna w internecie
2. Gawęcki J., Hryniewiecki L.: Żywienie człowieka. Podstawy nauki o żywieniu. PWN Warszawa 2007
3.Jarosz M., Bułchak-Jachymczyk B. Normy żywienia człowieka. Warszawa, Wydawnictwo Lekarskie PZWL
2008
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna - 20 osób
20.2. Materiały do zajęć
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
Katedra i Zakład Biologii Molekularnej, ul. Jedności 8 , 41-206 Sosnowiec
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Sosnowiec, ul. Narcyzów 1(ćwiczenia) – zgodnie z harmonogramem dostępnym na stronie Katedry i Zakładu Biologii Molekularnej
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01 Niezna przykłady i
biochemiczne
mechanizmy działania
odżywczych substancji
aktywnych na
komórki. (poniżej 70%
poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
Zna przykłady i
biochemiczne
mechanizmy działania
odżywczych substancji
aktywnych na
komórki. Wykazuje
zrozumienie złożonych
zasad przepływu
informacji genetycznej
i regulacji ekspresji
genów w organizmie
człowieka(powyżej
70% poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
Zna przykłady i
biochemiczne
mechanizmy działania
odżywczych substancji
aktywnych na
komórki. Wykazuje
zrozumienie złożonych
zasad przepływu
informacji genetycznej
i regulacji ekspresji
genów w organizmie
człowieka(powyżej
80% poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
Zna przykłady i
biochemiczne
mechanizmy działania
odżywczych substancji
aktywnych na
komórki. Wykazuje
zrozumienie złożonych
zasad przepływu
informacji genetycznej
i regulacji ekspresji
genów w organizmie
człowieka(powyżej
90% poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
Efekt 02 Potrafi przedstawić
wpływ działania
substancji odżyw-
czych w różnych
jednostkach choro-
bowych poniżej 70%
poprawnych odpowie
dzi w teście zaliczenio
wym)
Potrafi przedstawić wpływ działania substancji odżyw czych w różnych jed nostkach chorobo wych (powyżej 70%
poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
Potrafi przedstawić wpływ działania substancji odżyw czych w różnych jed nostkach chorobo wych (powyżej 80%
poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym)
Potrafi przedstawić wpływ działania substancji odżyw czych w różnych jednostkach chorobo wych (powyżej 90%
poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym) … Zna specjalistyczne
metody badania genomu, transkryptomu i proteomu , rozumie ich wykorzystanie w nutrigenomice
Zna specjalistyczne metody badania genomu, transkryptomu i proteomu , rozumie ich wykorzystanie w nutrigenomice
Zna specjalistyczne metody badania genomu, transkryptomu i proteomu , rozumie ich wykorzystanie w nutrigenomice
Efekt 0n
* ocena celująca – wiedza i umiejętności wykraczają poza wymagania określone dla oceny 5 „bardzo
dobry”
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: VI
6. Nazwa modułu: Moduł molekularno-biochemiczny Nazwa przedmiotu: Ścieżki sygnałowe
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Biologii Molekularnej, ul. Jedności 8, 41-200 Sosnowiec, e-mail: [email protected], http://www.biolmol.sum.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Prof. dr hab. n. med. Urszula Mazurek [email protected]
10. Cel kształcenia: Poznanie podstawowej wiedzy z zakresu mechanizmów przekazywania sygnałów molekularnych prowadzących do utrzymania homeostazy oraz regulacji procesów molekularnych zachodzących w komórkach. Studenci poznają zasady sygnalizacji między– i wewnątrzkomórkowej, aktywowanej po połączeniu agonisty z receptorem, ze szczególnym podkreśleniem plejotropowości cząstek sygnałowych (hormonów, cytokin czy ksenobiotyków) oraz zdobędą umiejętności oceny zmian aktywności biologicznej komórek na podstawie analizy porównawczej transkryptomów wybranych ścieżek sygnałowych.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Znajomość molekularnych podstaw regulacji cyklu komórkowego. Wymagane jest wcześniejsze zaliczenie kursów biologii z elementami genetyki, biologii molekularnej, biochemii.
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Znajomość rodzajów receptorów i ich mechanizmów działania oraz wtórnych przekaźników komórkowych i ich udziału w sygnalizacji. Zrozumienie podstaw plejotropowej aktywności wybranych cytokin
K2_W02 M2_W01
02 Posiada umiejętność efektywnego komunikowania się K2_U01 M2_U01
03 Ma świadomość potrzeby uzupełniania wiedzy specjalistycznej przez całe życie i potrafi dobrać właściwe źródła wiedzy i metody uczenia dla siebie i innych
K2_K01 M2_K01 M2_K02
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
03 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Seminaria Liczba godzin
S1 Oddziaływanie związków niskocząsteczkowych z błonami komórkowymi - rola białek G w aktywacji ścieżek sygnałowych.
3
S2 Cyklazy adenylowe i guanylowe w wewnatrzkomórkowym przekazywaniu sygnałów. Fosfolipidy inozytolowe w procesie przekazywania sygnałów.
3
S3 Ścieżki sygnałowe aktywowane przez receptory adrenergiczne. Ścieżki sygnałowe aktywowane przez receptory melatoninowe.
3
S4 Ścieżki sygnałowe aktywowane przez receptory estrogenowe cytoplazmatyczne. Ścieżki sygnałowe aktywowane przez receptory estrogenowe błonowe.
3
S5 Ścieżki sygnałowe aktywowane przez receptory limfocytów T. Ścieżki sygnałowe aktywowane przez receptory TLR.
3
S6 Rola MAP kinaz w regulacji proliferacji i apoptozy. 3
S7 Ścieżki sygnałowe aktywowane przez receptor dla insuliny. 3
S8 Inhibitory szlaku PI3K-Akt/PBK-mTOR w diagnostyce i terapii. 3
S9 Mechanizmy przekazywania sygnału, za pośrednictwem receptorów z aktywnością kinaz tyrozynowych.
3
S10 Ścieżki przekazywania sygnałów związane z mechanizmami naprawy genomu.
3
Łącznie 30
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Seminaria wykład konwersatoryjny, pogadanka, dyskusja
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu kształcenia
Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 kolokwium testowe 70% poprawnych odpowiedzi
02 przygotowanie prezentacji zaliczenie ustne
03 przygotowanie prezentacji zaliczenie ustne
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
Godziny kontaktowe z nauczycielem akademickim:
udział w seminariach 30h
konsultacje 5h
udział w zaliczeniu 5
łącznie 40h
Samodzielna praca studenta
przygotowanie do seminariów 20h
przygotowanie do kolokwium 10h
przygotowanie prezentacji 10h
łącznie 40h
Łącznie 80h
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
1
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
1
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1. Jerzy Z. Nowak, Jolanta B. Zawilska „Receptory i mechanizmy przekazywania sygnału”, PWN 2004. 2. Gerard M. Fuller, Dennis Shields “Podstawy molekularne biologii komórki” PZWL 2005.
19.2. Uzupełniająca
1. Krzyżowska M., Świątek W., Fijałkowska B., Niemiałtowski M. Rola kinaz MAP w odpowiedzi immunologicznej. Postępy Biologii Komórki 2009 (2), 295-309. 2. Mackiewicz U., Klemenska E, Beręsewicz A., Receptory betaadrenergiczne w zdrowym i niewydolnym sercu. Kardiologia Polska 3/2007 65: 294-302. 3. Ajduk A Rola jonów wapnia w aktywacji rozwoju zarodkowego u ssaków. Postępy biologii komórki t. 24 2007 nr 4 (715- 729). 4. Lewandowicz A., Kowalski M., Pawliczak R. Białka regulujące przekazywanie sygnału przez białka G (białka RGS) i ich znaczenie w regulacji odpowiedzi immunologicznej. Postepy Hig Med Dosw. (online), 2004; 58: 312-320.
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup
20.2. Materiały do zajęć
20.3. Miejsce odbywania się zajęć Sala wykładowa wyposażona w rzutnik multimedialny
20.4. Miejsce i godzina konsultacji Konsultacje bezpośrednie z wykładowcą, konsultacje z wykorzystaniem poczty elektronicznej
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 3,5 Na ocenę 4 Na ocenę 4,5 Na ocenę 5 Na ocenę celującą
Efekt 01 Student nie wykazuje się znajomością rodzajów receptorów i ich mechanizmów działania oraz wtórnych przekaźników komórkowych i ich udziału w sygnalizacji. Nie ma pojęcia o podstawach plejotropowej aktywności wybranych cytokin.
Student wykazuje się znajomością jakiś rodzajów receptorów i ich mechanizmów działania oraz wtórnych przekaźników komórkowych i ich udziału w sygnalizacji. W niewielkim stopniu rozumie podstawy plejotropowej aktywności wybranych cytokin.
Student wykazuje się znajomością niektórych rodzajów receptorów i ich mechanizmów działania oraz wtórnych przekaźników komórkowych i ich udziału w sygnalizacji. W dostatecznym stopniu rozumie podstawy plejotropowej aktywności wybranych cytokin.
Student wykazuje się dobrą znajomością rodzajów receptorów i ich mechanizmów działania oraz wtórnych przekaźników komórkowych i ich udziału w sygnalizacji. Rozumie podstawy plejotropowej aktywności wybranych cytokin.
Student wykazuje się ponadprzeciętną znajomością rodzajów receptorów i ich mechanizmów działania oraz wtórnych przekaźników komórkowych i ich udziału w sygnalizacji. Rozumie podstawy plejotropowej aktywności wybranych cytokin.
Student wykazuje się bardzo dobrą znajomością rodzajów receptorów i ich mechanizmów działania oraz wtórnych przekaźników komórkowych i ich udziału w sygnalizacji. Rozumie zasady plejotropowej aktywności wybranych cytokin.
Studenta cechuje doskonała znajomość rodzajów receptorów i ich mechanizmów działania oraz wtórnych przekaźników komórkowych i ich udziału w sygnalizacji. Potrafi celująco scharakteryzować plejotropową aktywność wybranych cytokin.
Efekt 02 Student nie posiada umiejętności efektywnego komunikowania się.
Student jest w stanie komunikować się w stopniu dostatecznym.
Student jest w stanie komunikować się w stopniu dość dobrym.
Studenta cechuje przeciętna umiejętność komunikowania się.
Studenta cechuje ponadprzeciętna umiejętność komunikowania się.
Student posiada umiejętności efektywnego komunikowania się.
Student posiada umiejętności efektywnego komunikowania się.
Efekt 03 Student nie potrafi dobrać właściwe źródła wiedzy i metody
Student z dużą trudnością dobiera właściwe źródła wiedzy i
Student z trudnością dobiera właściwe źródła wiedzy i
Student prawidłowo dobiera właściwe źródła wiedzy i
Student efektywnie dobiera właściwe źródła wiedzy i
Student ma świadomość potrzeby uzupełniania
Student ma świadomość potrzeby uzupełniania
uczenia dla siebie i innych.
metody uczenia dla siebie i innych.
metody uczenia dla siebie i innych.
metody uczenia dla siebie i innych.
metody uczenia dla siebie i innych.
wiedzy specjalistycznej przez całe życie i potrafi dobrać właściwe źródła wiedzy i metody uczenia dla siebie i innych.
wiedzy specjalistycznej przez całe życie i potrafi dobrać właściwe źródła wiedzy i metody uczenia dla siebie i innych w sposób celujący.
Karta przedmiotu
Informacje ogólne o module/przedmiocie
1. Kierunek studiów: Biotechnologia medyczna
2. Poziom kształcenia: studia pierwszego stopnia 3. Forma studiów: studia stacjonarne
4. Rok: III 5. Semestr: VI
6. Nazwa modułu: Moduł molekularno-biochemiczny Nazwa przedmiotu: Transkryptomika
7. Status modułu/przedmiotu: przedmiot do wyboru
8. Jednostka realizująca moduł/przedmiot: Katedra i Zakład Biologii Molekularnej, ul. Jedności 8, 41-200 Sosnowiec, e-mail: [email protected], http://www.biolmol.sum.edu.pl
9. Prowadzący moduł/przedmiot (imię, nazwisko, adres e-mail): Prof. dr hab. n. med. Urszula Mazurek, [email protected]
10. Cel kształcenia: Opanowanie przez studenta wiedzy w zakresie: budowy i funkcji kwasów rybonukleinowych ze szczególnym zwróceniem uwagi na mechanizmy regulacji aktywności transkrypcyjnej komórek z udziałem iRNA, miRNA, rybozymów,antysensownych oligonukleotydów i aptamerów. Opanowanie wiedzy i umiejętności w zakresie przeprowadzania badań laboratoryjnych z wykorzystaniem podstawowych technik biologii molekularnej w analizie transkryptomu oraz umiejętności korzystania z biomedycznych baz danych.
11. Wymagania wstępne w zakresie wiedzy, umiejętności i innych kompetencji: Ma ugruntowaną wiedzę z biologii molekularnej, biochemii i biologii komórki
12. Efekty kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Efekty kształcenia Student, który zaliczył moduł/przedmiot:
Odniesienie do efektów kształcenia
dla programu
Odniesienie do efektów kształcenia dla obszaru
01 Potrafi scharakteryzować organizację żywej materii Wykazuje znajomość budowy RNA i jego funkcji Rozumie mechanizm modyfikacji potranskrypcyjnych. Potrafi scharakteryzować mechanizmy przepływu informacji genetycznej w komórce. Wykazuje uporządkowaną i poszerzoną znajomość funkcjonowania organizmu człowieka na poziomie molekularnym
K2_W01 K2_W04 K2_W07
M2_W01 M2_W02 M2_W03
02 Potrafi wykorzystać metody badawcze stosowane w transkryptomice do poszukiwania nowych substancji
leczniczych . Potrafi wykorzystać kwasy rybonukleinowe w regulacji ekspresji genów w inżynierii genetycznej i terapii genowej. Ma widzę na temat błędów w wykonywaniu
prowadzonych badań.
K2_W08 K2_W15 K2_W19 K2_W27 K2_U06
M2_W03 M2_W05 M2_W07 M2_W10 M2_U03
03 Zna zasady pracy w pracowni biologii molekularnej oraz podstawowe metody badania, transkryptomu i potrafi posługiwać się podstawowymi metodami biologii molekularnej Potrafi poprawnie interpretować otrzymane wyniki i przeprowadzić ich walidację. Potrafi zabezpieczyć materiał biologiczny do analizy transkryptomu
K2_W11 K2_W16 K2_U02 K2_U03 K2_U13 K2_U20
M2_W03 M2_W05 M2_U01 M2_U02 M2_U07 M2_U13
.
13. Formy zajęć w odniesieniu do efektów kształcenia
Numer efektu
kształcenia
Forma zajęć dydaktycznych
wykład seminarium ćwiczenia
laboratoryjne ćwiczenia
praktyczne inne e-learning
01 X
02 X
03 X
14. Treści programowe
14.1. Forma zajęć: Wykłady Liczba godzin
Łącznie 0
14.2. Forma zajęć: seminaria
S1 Struktura i funkcje RNA w komórkach prokariotycznych i eukariotycznych
1
S2
Regulacje stabilności mRNA, czasu półtrwania RNA oraz poznanie mechanizmów degradacji RNA w komórkach prokariotycznych i eukariotycznych
2
S3 RNA pełniące funkcje przełączników genetycznych. 2
S4 Małe jąderkowe RNA w modyfikacji eukariotycznego rRNA 2
S5 Synteza i dojrzewanie RNA w komórkach prokariotycznych,
eukariotycznych i wirusów snRNA i alternatywne składanie eksonów
2
S6 Interferencyjny RNA w regulacji ekspresji genów 2
S7
biogeneza, mechanizm działania oraz funkcja fizjologiczna miRNA
sposoby organizacji i lokalizacja genów mikroRNA w komórkach
roślinnych i zwierzęcych. - Znaczenie mikroRNA w diagnostyce i w
terapii
2
S8 Metody wyznaczania aktywności transkrypcyjnej komórek 2
S9
Regulamin postępowania w pracowni biologii molekularnej – Podstawowe wyposażenie pracowni transkryptomiki – Zasady porowadzenia dokumentacji badań prowadzonych na poziomie analizy transkryptomu
1
S10
Jakościowa i ilościowa kontrola roztworów RNA w kolejnych etapach wyznaczania transkryptomów techniką mikromacierzy oligonukleotydowych
2
S11
Ocena jakościowa i ilościowa uzyskanych ekstraktów RNA techniką elektroforezy w żelu agarozowym oraz pomiaru spektrofotometrycznego. Wyznaczanie współczynnika RIN (RNA Integrity Number)
2
S12 Projektowanie sekwencji rybozymów i oligonukleotydów antysensownych. Strategie wyciszania genów
2
S13 Grupowanie transkryptomów metodą aglomeracji hierarchicznej 2
S14 Typowanie genów różnicujących grupy transkryptomów 2
S15 Strategie interpretacji uzyskanych wyników i walidacji otrzymywanych
wyników
2
S16 Projektowanie strategii analizy molekularnej na poziomie
transkryptomu w zależności od rozwiązywanego problemu
2
Łącznie 30
Łączna liczba godzin z przedmiotu 30
15. Metody kształcenia
15.1. Wykład
15.2. Seminaria symulacje, metody przypadków, metody sytuacyjne, dyskusje dydaktyczne
15.3. Ćwiczenia Laboratoryjne, praktyczne
15.4. …
16. Sposoby weryfikacji efektów kształcenia i sposoby oceny
Numer efektu
kształcenia Sposoby weryfikacji Forma zaliczenia
01 Zadania otwarte Test zaliczeniowy
02 Zadania otwarte Test zaliczeniowy
03 Przeprowadzenie badań ekstrakcja kwsów
nukleinowych, PCR i detekcja amplimerów
Sprawozdanie
17. Obciążenie pracą studenta
Forma aktywności Przeciętna liczba godzin na zrealizowanie aktywności
udział w seminariach 30
Udział w zaliczeniu 5
udział w konsultacjach 5
Łącznie 40
przygotowanie do seminariów 30
Przygotowanie do zaliczenia 10
Łącznie 40
Łącznie 80
Sumaryczna liczba punktów ECTS dla przedmiotu 3
18. Sumaryczne wskaźniki charakteryzujące przedmiot
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje na zajęciach wymagających bezpośredniego udziału nauczycieli akademickich
2
Liczba punktów ECTS, którą student uzyskuje w ramach zajęć o charakterze praktycznym
19. Literatura
19.1. Podstawowa 1.T.A. Brown: Genomy, PWN, Warszawa 2009 2. P. Węgleński „ Genetyka molekularna” Wydawnictwo Naukowe PWN Warszawa 2008 3.Turner P.C, McLennan A.G. Bates A.D., White M.R.H. Biologia molekularna. Krótkie wykłady. PWN, Warszawa 2000 4.AD.Baxevanis, BFF Ouellette: Bioinformatyka. Podręcznik do analizy genów i białek, PWN, Warszawa 2004
3. . PG Higgs, TK Attwood. Bioinformatyka i ewolucja molekularna PWN, Warszawa 2008
19.2. Uzupełniająca
1.Richard J. Epstein Biologia molekularna człowieka. Wydawnictwo Czelej 2006
2. JM Berg, JL Ttymoczko, Lubert Stryer Biochemia. Wydawnictwo Naukowe PWN Warszawa 2009 3. J. Bal Biologia molekularna w medycynie Wydawnictwo Naukowe PWN Warszawa 2008
20. Inne przydatne informacje o module/przedmiocie
20.1. Liczebność grup Grupa seminaryjna – 20 osób
20.2. Materiały do zajęć instrukcje do ćwiczeń, zagadnienia do przygotowania na ćwicz. publikacje z czasopism naukowych, podręczniki
20.3. Miejsce odbywania się zajęć
Sosnowiec, ul. Kasztanowa 3 (wykłady), ul. Kasztanowa 3 (seminaria) ul. Narcyzów 1(ćwiczenia)
20.4. Miejsce i godzina konsultacji
Sosnowiec, ul. Narcyzów 1: indywidualne spotkania ze studentami – zgodnie z harmonogramem dostępnym na stronie Katedry i Zakładu Biologii Molekularnej
20.5. Inne
21. Formy oceny – szczegóły
Efekt Na ocenę 2 Na ocenę 3 Na ocenę 4 Na ocenę 5
Efekt 01 Potrafi scharakteryzować organizację żywej materii Wykazuje znajomość budowy RNA i jego funkcji Rozumie mecha-nizm modyfikacji potranskrypcyjnych. Wykazuje uporząd-kowaną i posze-rzoną znajomość funkcjonowania organizmu czło-wieka na poziomie molekularnym poniżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście
zaliczeniowym )
Potrafi scharakteryzować organizację żywej materii Wykazuje znajomość budowy RNA i jego funkcji Rozumie mechanizm modyfikacji potranskrypcyjnych. Potrafi scharakteryzować mechanizmy przepływu informacji genetycznej w komórce. Wykazuje uporządkowaną i poszerzoną znajomość funkcjonowania organizmu człowieka na poziomie molekularnym (powyżej 70% poprawnych odpowiedzi w teście
zaliczeniowym )
Potrafi scharakteryzować organizację żywej materii Wykazuje znajomość budowy RNA i jego funkcji Rozumie mechanizm modyfikacji potranskrypcyjnych. Potrafi scharakteryzować mechanizmy przepływu informacji genetycznej w komórce. Wykazuje uporządkowaną i poszerzoną znajomość funkcjonowania organizmu człowieka na (poziomie molekularnym poniżej 80% poprawnych odpowiedzi w teście
zaliczeniowym )
Potrafi scharakteryzować organizację żywej materii Wykazuje znajomość budowy RNA i jego funkcji Rozumie mechanizm modyfikacji potranskrypcyjnych. Potrafi scharakteryzować mechanizmy przepływu informacji genetycznej w komórce. Wykazuje uporządkowaną i poszerzoną znajomość funkcjonowania organizmu człowieka na (poziomie molekularnym poniżej 90% poprawnych odpowiedzi w teście
Efekt 02 poniżej 70%
poprawnych
odpowiedzi w teście
zaliczeniowym )
. Potrafi wykorzystać
kwasy rybonukleinowe w
regulacji ekspresji genów
w inżynierii genetycznej i
terapii genowej. Ma widzę
na temat błędów w
wykonywaniu
prowadzonych badań.
(powyżej 70% popra-
wnych odpowiedzi w
teście zaliczeniowym )
Potrafi wykorzystać
metody badawcze
stosowane w
transkryptomice do
poszukiwania nowych
substancji leczniczych .
Potrafi wykorzystać
kwasy rybonukleinowe
w regulacji ekspresji
genów Ma widzę na
temat błędów w
wykonywaniu
prowadzonych
badań(powyżej 80%
poprawnych odpowiedzi
w teście zaliczeniowym )
Potrafi wykorzystać
metody badawcze
stosowane w transkrypto-
mice do poszukiwania
nowych substancji lecz-
niczych . Potrafi wykorzy-
stać kwasy rybonukleino-
we w regulacji ekspresji
genów w inżynierii
genetycznej i terapii
genowej. Ma widzę na
temat błędów w
wykonywaniu
prowadzonych badań i
potrafi przeprowadzić
walidację otrzymywanych
wyników. (powyżej 90%
poprawnych odpowiedzi w
teście zaliczeniowym )
Efekt 03
Potrafi wyznaczyć profil aktywności transkrypcyjnej wybranych genów. Potrafi posługiwać się naukowymi bazami internetowymi potrafi wyszukać potrzebne
informacje, znaleźć konserwowaną lub zmienną sekwencje nukleotydową i zaprojektować
startery do analizy modyfikacji potranskrywcyjnej
Top Related