Powstawanie reaktywnych form tlenubiotka.mol.uj.edu.pl/zbm/handouts/2015/AL/wyklad_2...Kompleks I...
Transcript of Powstawanie reaktywnych form tlenubiotka.mol.uj.edu.pl/zbm/handouts/2015/AL/wyklad_2...Kompleks I...
Biochemia stresu oksydacyjnego
Dr hab. Agnieszka Łoboda
Literatura:
Grzegorz Bartosz „Druga twarz tlenu”
Barry Halliwell & John Gutteridge „Free radicals in biology and medicine”
Powstawanie reaktywnych form tlenu
w komórkach
Wykład 2
Literatura: Grzegorz Bartosz „Druga twarz tlenu” Barry Halliwell & John Gutteridge „Free radicals in biology and medicine” Woyda-Płoszczyca & Jarmuszkiewicz, Postępy Biochemii, 2008
Postępy Biochemii, 2006
Etapy powstawanie reaktywnych form tlenu
Reaktywne formy tlenu są pośrednimi produktami
kolejnych etapów redukcji tlenu
Anionorodnik ponadtlenkowy
O2- 2
sigma delta
tlen
trypletowy
anionorodnik
ponadtlenkowy
σ1s
σ*1s
σ2s
σ*2s
σ2p
π2p
π*2p
σ*2p Powstaje w wyniku jednoelektronowej redukcji tlenu
Może utleniać:
* centra siarkowo-żelazowe enzymów (np. akonitazy) – ich
utlenienie prowadzi do utlenienia żelaza i inaktywacji
enzymów;
* NO – powstaje nadtlenoazotyn
W obecności żelaza reaguje z nadtlenkiem wodoru dając
rodnik hydroksylowy (reakcja Habera-Weissa)
Ulega spontanicznej dysmutacji do nadtlenku wodoru i tlenu;
reakcja ta jest katalizowana przez dysmutazy ponadtlenkowe
(SOD)
Nadtlenek wodoru
- Powstaje w wyniku spontanicznej lub katalizowanej przez SOD dysmutacji
anionorodnika ponadtlenkowego.
- Powstaje w wyniku:
* jednoelektronowej redukcji nadtlenku wodoru (najważniejsze źródło rodnika
hydroksylowego w komórkach)
. H2O2 + e- + H+ H2O + OH
Źródła ROS w komórce
Enzymy generujące H2O2:
np.
* oksydaza aldehydowa
* oksydaza D-aminokwasowa
* okydaza a-hydroksykwasowa
* oksydaza ksantynowa
* oksydaza acetylokoenzymu A
* oksydaza glutarylokoenzymu A
* oksydaza galaktozowa
* oksydaza glikolanowa
Enzymy generujące O2
np.
* oksydaza ksantynowa
* oksydaza aldehydowa
* oksydaza diaminowa
* reduktaza cytochromu P450
* reduktaza glutationowa
* oksydaza galaktozowa
* mieloperoksydaza
* oksydoreduktaza NADPH
* hydroperoksydaza prostaglandynowa
* tyrozynaza
* syntaza tlenku azotu
* reduktaza cytochromu b5
* lipooksygenaza
* dioksygenaza tryptofanowa
. - Reakcje enzymatyczne
Wybuch oddechowy fagocytów
Komórki fagocytujące organizmu (granulocyty, monocyty, makrofagi) reagują na „intruza”
kilkudziesięciokrotnym wzrostem zużycia tlenu (wybuch oddechowy – wybuch tlenowy, ang.
respiratory burst)
Fagocyty wytwarzają i uwalniają na zewnątrz ogromne ilości anionorodnika ponadtlenkowego,
który częściowo ulega dysmutacji do nadtlenku wodoru.
http://macscience.wordpress.com/level-2-biology/cells/
Kwas podchlorawy powstaje w reakcji nadtlenku
wodoru i chlorku, w reakcji katalizowanej przez
mieloperoksydazę w fagocytach
- Kwas podchlorawy jest silnym utleniaczem, reagującym z białkami, lipidami,
kwasami nukleinowymi i węglowodanami.
- Produkcja kwasu podchlorawego w czasie wybuchu tlenowego w fagocytach
stanowi istotny mechanizm obrony przed patogenami. W warunkach
chronicznego zapalenia (np. w miażdżycy) może prowadzić do uszkodzenia
tkanek organizmu.
- Inaktywacja kwasu podchlorawego zachodzi w wyniku reakcji z glutationem
lub tauryną (obecną zwłaszcza w neutrofilach).
Wiele gatunków bakterii zabijanych jest
bezpośrednio przez układ
mieloperoksydaza/nadtlenek wodoru/kwas
podchlorawy. Celem dla tego systemu są
przede wszystkim bakteryjne białka żelazowo-
siarkowe, błonowe białka transportujące,
systemy generujące ATP oraz miejsca startu
replikacji DNA.
- Cykle redoks i utleniania ksenobiotyków (trucizny do zwalczania szkodników)
- Utlenianie białek oddechowych (hemoglobiny, mioglobiny)
hem-Fe2+ + O2 → hem-Fe3+ + O2-˙
> reduktaza methemoglobinowa w erytrocytach
> w obecności donorów elektronów może zachodzić dwuelektronowa
redukcja tlenu związanego z hemoglobiną, w wyniku czego powstaje
nadtlenek wodoru
- Samoutlenianie związków niskocząsteczkowych (np. związków tiolowych)
Źródła ROS w komórce
- Łańcuch oddechowy w mitochondriach (najważniejsze komórkowe źródło
RFT; około 1-4% tlenu ulega redukcji jednoelektronowej)
Źródła ROS w komórce
Mitochondrium
Stove and Camara. Antioxid Redox Signal 2009.
- Zewnętrzna błona mitochondrialna:
* stosunek wagowy białek do fosfolipidów: ~1:1
* duża zawartość poryn
- Cząsteczki o masie do ~6 kDa mogą swobodnie dyfundować do przestrzeni
międzybłonowej. Większe muszą mieć sekwencję sygnałową na N-końcu,
pozwalającą na wiązanie do translokaz.
- Przestrzeń międzykomórkowa:
* stężenie małych cząsteczek podobne jak w cytozolu
* skład białek jest odmienny niż w cytozolu
- Wewnętrzna błona mitochondrialna:
* stosunek wagowy białek do fosfolipidów: ~3:1
* duża zawartość kardiolipiny (zmniejszenie przepuszczalności błony)
* brak poryn
* transport wszystkich substancji wymaga transporterów
* obecność białek odpowiedzialnych za fosforylację oksydacyjną, syntezę i
hydrolizę ATP, transport białek regulatorowych.
Mitochondrialny łańcuch transportu elektronów
Kompleks I – dehydrogenaza NADH
Kompleks II - dehydrogenaza bursztynianowa
Kompleks III – kompleks cytochromów bc1
Kompleks IV – oksydaza cytochromowa
Jony Fe-S – centra żelazo-siarkowe
Koenzymy – mononukleotyd flawinowy (FMN), dinukleotyd flawinowy (FAD), ubichinon (Q) –
centra oksydoredukcyjne
Mitochondrialny łańcuch transportu elektronów
Kompleks I – dehydrogenaza NADH
Kompleks II - dehydrogenaza bursztynianowa
Kompleks III – kompleks cytochromów bc1
Kompleks IV – oksydaza cytochromowa
Mitochondrium
L. Stryer. Biochemia; Stove and Camara. Antioxid Redox Signal 2009.
Reakcje w matriks mitochondrialnej - Pirogronian produkowany podczas glikolizy jest transportowany do matriks,
dekarboksylowany oksydacyjnie i przyłączany do Co-A (powstaje CO2, acetylo-CoA i NADH).
- Grupa acetylowa przyłączana jest do szczawiooctanu (C4), tworząc cytrynian (C6). Izomer
cytrynianu jest następnie dekarbokylowany oksydacyjnie do a-ketoglutaranu (C5) i
bursztynianu (C4), z którego regenerowany jest szczawiooctan. Przy tym 3 jony wodorowe (6
e-) są przenoszone na NAD+, a para atomów wodoru (2 e-) na FAD.
- W cyklu Krebsa powstają 2
cząsteczki CO2, czemu towarzy-
szy produkcja 3 cząsteczek
NADH i 1 cząsteczki FADH2.
Powstaje też 1 wysokoener-
getyczne wiązanie fosforanowe,
a 9 kolejnych ATP może
powstawać podczas utleniania
NADH i FADH2 za pośrednictwem
łańcucha oddechowego.
- Przyjmuje elektrony z NADH, i przenosi je przez liczne kofaktory do pierwszego ruchliwego
nośnika elektronów, utlenionego koenzymu Q. Uzyskana w ten sposób energia jest
wykorzystywana do przeniesienia czterech protonów z macierzy mitochondrialnej do
przestrzeni międzybłonowej.
- Koenzym Q otrzymuje elektrony także z kompleksu II (dehydrogenazy bursztynianowej) oraz
dehydrogenazy aldehydu 3-fosfoglicerolu.
- Zredukowany koenzym Q przekazuje elektrony na kompleks III, skąd trafiają na cytochrom c,
ulokowany w przestrzeni międzybłonowej. Uzyskana w ten sposób energia wykorzystywana
jest do przeniesienia czterech protonów do przestrzeni międzybłonowej.
- Z cytochromu c elektrony przenoszone są na kompleks IV (oksydazy cytochromu c), gdzie
cząsteczkowy tlen redukowany jest do wody. Uzyskana w ten sposób energia wykorzystywana
jest do przeniesienia dwóch protonów do przestrzeni międzybłonowej.
Łańcuch oddechowy
Łańcuch oddechowy
- Przepływ elektronów z NADH lub FADH2 do O2 poprzez łańcuch oddechowy powoduje
wypompowywanie protonów z macierzy. Wytworzona siła protonomotoryczna obejmuje dwie
składowe: gradient pH (gradient protonowy) i transbłonowy potencjał elektryczny.
- W łańcuchu oddechowym powstaje anionorodnik ponadtlenkowy w wyniku
jednoelektronowej redukcji tlenu. Generowany jest w kompleksie I (dehydrogenaza
NADH) i III (koenzym Q = ubichinon - reduktaza cytochromowa).
L. Stryer. Biochemia; Stove and Camara. Antioxid Redox Signal 2009.
Nature 414, 813-820
Łańcuch oddechowy
UH2 + O2 → UH˙ + H+ + O2-˙
UH˙ + O2 → U + H+ + O2-˙
Przepływ elektronów nie jest szczelny – mogą one przeciekać i reagować z cząsteczką tlenu jednoelektronowo tworząc
anionorodnik ponadtlenkowy. Kompleksy I i III uczestnicza w przemianach oksydoredukcyjnych ubichinonu, w których
występuje niestabilna forma semichinonu, odpowiedzialna za przeciek elektronów i prowadząca do wytworzenia RFT.
Źródła ROS w komórce
VDAC
Voltage dependent anion
channel
IMAC
Inner mitochondrial
membrane anion channel
Związki ułatwiające identyfikację miejsc tworzenia
reaktywnych form tlenu
Stove and Camara. Antioxid Redox Signal 2009
Produkcja O2˙- w kompleksie I łańcucha oddechowego
Stove and Camara. Antioxid Redox Signal 2009
Kompleks I (oksydoreduktaza NADH)
- Jest transbłonowym kompleksem enzymatycznym, który:
* utlenia NADH, przekazując elektrony na ubichinon
* jest połączony z pompą protonową, a jego aktywność przyczynia się do powstania
gradientu protonów
* stanowi jedno z dwóch głównych miejsc pobierania równoważników redukcyjnych
(drugie miejsce to kompleks II)
* jest głównym źródłem ROS w komórce w warunkach fizjologicznych
Koenzym Q (ubichinon)
- Ubichinon jest kluczowym transporterem elektronów w łańcuchu oddechowym i
ważnym antyoksydantem
- Niedobór lub dysfunkcja ubichinonu prowadzi do różnorodnych efektów
klinicznych:
* encefalomiopatii
* niemowlęcej choroby wieloukładowej
* ataksji móżdżkowej
* izolowanej miopatii mitochondrialnej
* zespołu nerczycowego
Dehydrogenaza bursztynianowa
Rutter et al. Mitochondrion 2010.
- Dehydrogenaza bursztynianowa (SDH) jest zarówno częścią łańcucha oddechowego
jak i cyklu Krebsa, w którym utlenia bursztynian do fumaranu
- SDH zbudowana jest z czterech jednostek, wszystkie kodowane są przez geny
jądrowe
- Jest jedynym kompleksem łańcucha oddechowego, który nie pompuje protonów
przez wewnętrzną błonę mitochondrialną
- Zaburzenia funkcji SDH są bardzo
rzadkie (2-4% zaburzeń łańcucha
oddechowego) i prowadzą do:
* zespołu Leigha (choroba neuro-
degeneracyjna rozwijająca się u
niemowląt)
* rodzinnej paragangliomy (przy-
zwojaka, nowotworu układu współ-
czulnego lub przywspółczulnego)
Stove and Camara. Antioxid Redox Signal 2009
utlenianie
pirogronianu
utlenianie
samego
bursztynianu
NAD O2
Odwrotny transport elektronów
Odwrotny transport elektronów
- Kiedy mitochondria utleniają pirogronian,
elektrony są przekazywane z NADH do chinonu (Q)
poprzez FMN i centra Fe-S. Powstający QH' jest
redukowany do chinolu (QH2).
- Kiedy mitochondria utleniają jedynie bursztynian
(przy braku innych substratów) elektron
przenoszony jest wbrew potencjałowi redoks ze
zredukowanego chinonu (chinol, QH2) na NAD+,
zamiast w stronę O2.
Produkcja O2˙- w kompleksie III łańcucha oddechowego
Stove and Camara. Antioxid Redox Signal 2009
Kompleks III (oksydoreduktaza
koenzym Q:cytochrom c)
- Budowa kompleksu III:
* zewnętrzne miejsce chinonowe (Qo)
* wewnętrzne miejsce chinonowe (Qi)
* cytochrom b566 (cyt b566)
* cytochrom b562 (cyt 562)
* białko Rieske (z kompleksami Fe-S)
* cytochrom c1
* cytochrom c
- Działanie kompleksu III:
* Ubichinon jest redukowany do QH2 po
stronie wewnętrznej (Qi) i migruje do strony
zewnętrznej (Qo) uwalniając 2H+ i przenosząc 1
e- na cyt c1 za pośrednictwem białka Rieske.
Powstaje przy tym QH' i Q.
* Drugi e- redukuje cytochrom b, dzięki czemu
elektrony są przenoszone na wewnętrzną stronę
błony, gdzie redukują chinon do QH2.
* cyt c i cyt c1 przyjmują tylko pojedynczy e-,
dlatego pełna redukcja Q wymaga utlenienia
dwóch cząsteczek QH2 w dwóch kolejnych
cyklach.
Produkcja O2˙- w kompleksie III łańcucha oddechowego
Stove and Camara. Antioxid Redox Signal 2009
- Inhibitory kompleksu III:
* Myksotiazol: blokuje miejsce Qo
uniemożliwiając przeniesienie
elektronu z QH2 do centrów Fe-S i
cytochromu b.
* Stigmatelina: blokuje przeniesienie
pierwszego elektronu na centrum Fe-S.
* Antymycyna A: wiąże się do miejsca
Qi i blokuje przeniesienie drugiego
elektronu do miejsca Qi. Dzięki temu
hamuje powstawanie QH2 i nasila
tworzenie O2'-.
- Wydaje się, że O2'- tworzony na
kompleksie III jest uwalniany do
przestrzeni międzybłonowej (czyli jest
dysmutowany głównie przez CuZnSOD).
To wciąż jednak nie jest jasne.
- Cyt-c jest zakotwiczony w wewnętrznej błonie mitochondrialnej za pośrednictwem
kardiolipiny (Ma 4 nasycone kwasy tłuszczowe – zmniejsza przepuszczalność błon).
- W obecności ROS kompleks cyt-c/kardiolipina działa jak peroksydaza kardiolipiny,
tworząc wodoronadtlenki kardiolipiny, o zmniejszonym powinowactwie do cyt-c.
Uwalnianie cyt-c jest jednym ważnych etapów wczesnej apoptozy.
- Uwalnianie cyt-c jest procesem dwuetapowym:
* utrata kontaktu z wewnętrzną błoną mitochondrialną (hamowane przez NO)
* uwalnianie do cytozolu przez uszkodzoną zewnętrzną błonę mitochondrialną
(nasilane przez Bid, Bax, lub Bak – dezintegrujące błonę).
Uwalnianie cytochromu c
Endothelium
Vessel Lumen LDL
LDL Readily Enter the Artery Wall Where They May be Modified
LDL
Intima
Modified LDL
Modified LDL are Proinflammatory
Hydrolysis of Phosphatidylcholine to Lysophosphatidylcholine
Other Chemical Modifications
Oxidation of Lipids and ApoB
Aggregation
Ross R. N Engl J Med 1999
Rozwój blaszki miażdżycowej
LDL
LDL
Endothelium
Vessel Lumen
Intima
Monocyte
Modified LDL
MCP-1
Rozwój blaszki miażdżycowej
Ross R. N Engl J Med 1999
LDL
LDL
Endothelium
Vessel Lumen
Intima
Monocyte
Modified LDL
Modified LDL Promote Differentiation of Monocytes into Macrophages
MCP-1
Macrophage
Rozwój blaszki miażdżycowej
Ross R. N Engl J Med 1999
LDL
LDL Endothelium
Vessel Lumen Monocyte
Macrophage
MCP-1
Adhesion Molecules
Foam Cell
Modified LDL Taken up by Macrophage
Intima
Rozwój blaszki miażdżycowej
Ross R. N Engl J Med 1999
LDL
LDL
Endothelium
Vessel Lumen Monocyte
Modified LDL
Macrophage
MCP-1
Adhesion Molecules
Cytokines
Intima
Rozwój blaszki miażdżycowej
Ross R. N Engl J Med 1999
Oksydacyjne modyfikacje lipoprotein, a
szczególnie LDL mają kluczowy wpływ na rozwój
aterogenezy
Utlenienie LDL prowadzi do powstawania
różnorodnych fragmentów lipidowych i białkowych
lipoprotein.
Produkty peroksydacji lipidów takie jak 4-
hydroksynonenal modyfikują lipoproteiny (oxLDL)
Tak zmodyfikowana cząsteczka lipoproteiny nie
jest rozpoznawana przez receptor dla LDL
podlegający regulacji na zasadzie sprzężenia
zwrotnego, ale przez tzw. „scavenger receptor”
(SR),czego wynikiem jest ciągły napływ
obładowanych lipidami cząsteczek lipoprotein do
ściany naczyń.
Oksydacyjna teoria miażdżycy
Cukrzyca
Najgroźniejsze powikłania cukrzycy
wynikają z dysfunkcji śródbłonka naczyń
krwionośnych. Mikroangiopatia dotyczy
przede wszystkim siatkówki i może
prowadzić do rozwoju retinopatii
cukrzycowej, a w rezultacie do utraty
wzroku. Zmiany w małych naczyniach
przyczyniają się też do uszkodzeń nerek i
degeneracji nerwów. W wyniku
makroangiopatii może zostać uszkodzony
mięsień sercowy. Innym przykładem jest
tzw. syndrom stopy cukrzycowej, czyli
chroniczne niegojące się rany,
prowadzące do owrzodzeń, nekrozy i
ostatecznie amputacji.
- Typu I (insulinozależna)
- Typu II (insulinoniezależna) - insulinooporność
Obecnie uważa się, że pierwotną przyczyną uszkodzenia komórek w cukrzycy jest
przewlekła hiperglikemia oraz oporność na insulinę. Oba czynniki wpływają na
ostre zmiany w metabolizmie komórek oraz na długoterminowe zmiany w
makrocząsteczkach. Procesy te są modyfikowane dodatkowo przez czynniki
genetyczne podatności osobniczej oraz przez niezależne czynniki, jak nadciśnienie
lub hiperlipidemia.
Uszkodzenia tkanki zarówno w przypadku mikroangiopatii jak i makroangiopatii
powstają na skutek wewnątrzkomórkowego stresu oksydacyjnego, indukowanego
wzmożoną produkcją anionorodnika ponadtlenkowego w mitochondrialnym
łańcuchu transportu elektronów, powodującego apoptozę dojrzałych komórek
śródbłonka
Cukrzyca
W warunkach hiperglikemii, większa niż zwykle ilość glukozy wchodzi w cykl metaboliczny. W
wyniku intensywniejszych przemian cyklu kwasów trójkarboksylowych do łańcucha
mitochondrialnego dostarczana jest zbyt duża ilość NADH i FADH2. W konsekwencji gradient
napięcia w poprzek błony mitochondrialnej rośnie aż do momentu krytycznego, w którym
zablokowany jest transport elektronów w kompleksie III, co powoduje cofnięcie elektronów do
koenzymu Q, gdzie są one przyłączane do cząsteczek tlenu. W ten sposób wygenerowane
zostają anionorodniki ponadtlenkowe.
Cukrzyca
Mitochondrialny system antyoksydacyjny
Mitochondria stanowiąc istotne źródło RFT posiadają rozbudowany system
antyoksydacyjny składający się z
Białek enzymatycznych: dysmutazy ponadtlenkowe, katalaza,
peroksydazy)
Związków niskocząsteczkowych czy białek nieenzymatycznych: glutation,
askorbinian, tioredoksyna, białka rozprzęgające
G. Valacchi and P.A. Davis (eds). Oxidants in Biology. 2008
Białka rozprzęgające (UCP)
UCP – ang. Uncoupling Protein -mitochondrialne systemy rozpraszające energię
Białka wewnętrznej błony mitochondrialnej
Burzą protonowy gradient elektrochemiczny wytworzony przez łańcuch oddechowy
Działanie UCP jest napędzane
przez potencjał błonowy
(ujemny wewnątrz
mitochondrium) oraz kwaśne pH
UCP są aktywowane przez wolne
kwasy tłuszczowe (FFA – free
fatty acids)
Upośledzenie działania białek
UCP może wpływać na
funkcjonowanie komórek i
organów
G. Valacchi and P.A. Davis (eds). Oxidants in Biology. 2008
- Białko UCP (UCP1) zostało po raz pierwszy opisane
w brunatnych adipocytach, odpowiedzialnych za
termogenezę bezdrżeniową.
- UCP pozwala na powrót elektronów do matriks
mitochondrialnej bez produkcji ATP (może więc
zachodzić przy niedoborze ADP, zmniejszając ryzyko
nadmiernej akumulacji H+ w przestrzeni między-
błonowej). Towarzyszy temu produkcja ciepła.
- UCP2 odgrywa rolę w regulacji wydzielania
insuliny.
- UCP3 ulega ekspresji głównie w mięśniach
(szkieletowych, mięśniu sercowym) i ma działanie
antyoksydacyjne.
- UCP4 i UCP5 produkowane są głównie w układzie
nerwowym i mają działanie antyoksydacyjne.
Białka rozprzęgające (UCP)
Termogeneza bezdrżeniowa
- Termogeneza bezdrżeniowa:
* produkcja ciepła w brunatnej tkance tłuszczowej (BAT)
* głównie u zwierząt hibernujących i u noworodków (wyjątek: świniowate)
* u szczurów: 3 g BAT zużywa 2 x więcej tlenu niż podstawowy metabolizm (BMR)
reszty ciała (czyli 350-400 g)
* u ludzi jest ok. 50 g BAT, które mogą zużywać ok. 20% tlenu niż BMR
Buffy et al. Br J Canc 2011.
Tseng et al. Nat Rev Drug Discov 2010.
BAT
- BAT u gryzoni:
* odpowiada za termogenezę
bezdrżeniową
* zwiększa wydatki energe-
tyczne
* zmniejsza otyłość
* zmniejsza tworzenie białych
adipocytów
- BAT u ludzi:
* jest obecny przez całe życie,
ale w niewielkich ilościach
(wykrywalny w PET/CT), głów-
nie między łopatkami (u nowo-
rodków) lub nad obojczykami (u
dorosłych
UCP-1
- Kluczowym białkiem w termogenezie bezdrżeniowej jest UCP-1. Funkcja innych białek UCP
jest mniej istotna.
- Transport protonów przez UCP-1 zależy od pary histydyn, których nie ma w innych UCP.
- Jest eksprymowany w brunatnej tkance tłuszczowej (BAT)
- Ekspresja UCP-1 jest indukowana przez kwasy tłuszczowej (prawdopodobnie poprzez
aktywację czynnika PPARd)
Woyda-Płoszczyca & Jarmuszkiewicz, 2008
Produkcja insuliny w komórkach b
Regulacja sekrecji insuliny z udziałem UCP2 w
komórkach β trzustki. Glukoza jest
transportowana do komórki na nośniku
glukozowym. Utlenianie glukozy, na które składa
się glikoliza, cykl kwasów trikarboksylowych
(TCA) oraz transport elektronów w łańcuchu
oddechowym (RC) mitochondrium, prowadzi do
wytworzenia protonowego gradientu
chemicznego (ΔμH+), który z kolei napędza
syntezę ATP. Wzrastający poziom ATP w komórce
β trzustki, jako konsekwencja podwyższonego
poziomu cukru we krwi, przyczynia się do
zamknięcia wrażliwych na ATP kanałów
potasowych (KATP) błony plazmatycznej.
Prowadzi to do depolaryzacji błony i otwarcia
kanałów wapniowych bramkowanych napięciem.
Napływ wapnia do komórki uruchamia proces
wydzielania insuliny. Aktywność UCP2
rozprasza ΔμH+ i tym samym obniża wydajność
syntezy ATP. UCP2 może więc pełnić funkcję
negatywnego regulatora stymulowanego glukozą
wydzielania glukozy w komórkach β wysepek
trzustkowych
UCP w łańcuchu oddechowym
- Niedobór UCP może zwiększać produkcję ATP w mitochondriach.
- W komórkach b trzustki:
* pobieranie glukozy przyczynia się do wzrostu aktywności łańcucha oddechowego
i zwiększenia produkcji ATP z ADP. To stymuluje fuzję pęcherzyków zawierających
insulinę i prowadzi do wydzielania insuliny.
* Wysoki stosunek ATP/ADP aktywuje UCP2, co zmniejsza gradient protonów i
obniża produkcję ATP, obniżając tym samym wydzielanie insuliny.
- Czynnikiem aktywującym UCP2 jest prawdopodobnie anionorodnik ponadtlenkowy.
Białka rozprzęgające (UCP)
Chan et al. Diabetes 2004.
- Homologi UCP znane są również u Drosophila melanogaster i Caenorhabditis
elegans
- Ewolucyjnie najstarszą formą UCP jest prawdopodobnie UCP-4 (u ssaków – obecny
w mózgu)
- Funkcje białek UCP:
* regulacja termogenezy (UCP-1)
* regulacja metabolizmu kwasów tłuszczowych (UCP-2 i UCP-3)
* zmniejszenie produkcji ROS (UCP-1, UCP-2, UCP-3, UCP-4, UCP-5)
* zahamowanie wydzielania insuliny (UCP-2)
* regulacja apoptozy (UCP-4)
- Myszy UCP KO mają normalny fenotyp, ale:
* UCP-1 KO – wrażliwe na zimno, podatne na tycie
* UCP-2 KO – zwiększona produkcja ROS
* UCP-3 KO – zwiększona produkcja ROS, zmniejszone utlenianie kwasów
tłuszczowych
UCP – mitochondrialne systemy rozpraszające energię