Wszystko jest trucizną, decyduje tylko dawka.
description
Transcript of Wszystko jest trucizną, decyduje tylko dawka.
Wszystko jest trucizną, decyduje tylko dawka.Phillippus Aureolus Theophrastus Bombastus von Hohenheim (Paracelsus)
LEKOOPORNOŚĆmolekularne mechanizmy
Oporność bakterii na antybiotyki
Oporność bakterii
Oporność – zdolność drobnoustroju do przeciwstawienia się antybiotykowi
Tolerancja na lek – bakteria nie ginie lecz trwa nie rosnąc nie dzieli się (bakteriostaza)
wiąże się ze stanem fizjologicznym bakterii (np. głodzenie spowalnia wzrost – większa tolerancja) oraz miejscem infekcji (trudno dostępne tkanki jak kość czy zastawki sercowe – bakterie rosną wolno i tolerują β-laktamy)
Oporność bakterii
Oporność wrodzona – stała cecha gatunku, szczepu lub grupy bakterii (np. penicylina działa na Gram +, a nie działa na Gram -)
Oporność nabyta – początkowo wrażliwe bakterie nabywają oporność na skutek mutacji lub nabycia genu/genów oporności od innych bakterii; zmiana ta staje się dziedziczna
Oporność krzyżowa – rozwój jednej oporności pociąga za sobą oporność na leki tej samej grupy
Oporność równoległa – rozwój jednej oporności pociąga za sobą oporność na leki o podobnym schemacie działania
Oporność bakterii
WyleczenieEfekt paradoksalny – niskie stężenie antybiotyku zabija całą populację a w wysokich stężeniach bakterie stają się oporne (np. stosowanie cefalosporyn na Proteus vulgaris)Przetrwanie części populacji bakteryjnej mimo stosowania antybiotyku (bakterie wytwarzające glikokaliks, który utrudnia penetrację leku oraz fakt, że bakterie na powierzchni chronię te rezydujące głębiej)Zależność bakterii od antybiotyku – powstaje na skutek mutacji, np. szczepy prątków gruźlicy mające mutacje genów kodujących białka rybosomowe S8 i S12 (antybiotyk staje się konieczny dla składania rybosomu lub przebiegu translacji)
EFEKTY działania chemioterapiiEF
EKT
TER
API
I
0%
100%
Oporność bakterii
Podatność bakterii na chemioterapię
test dyfuzji krążkowej
Oporność bakterii
test E
MIC - najmniejsze stężenie hamujące wzrost
MIC
Podatność bakterii na chemioterapię
Oporność bakterii
test rozcieńczeń
MIC
Podatność bakterii na chemioterapię
Oporność bakterii
Podatność bakterii na chemioterapię
metody molekularne
PCR – łańcuchowa reakcja polimerazy (czy jest obecny gen warunkujący oporność ?)
SSCP – analiza polimorfizmu konformacji jednoniciowego DNA (mutacja w znanym genie ?)
Oporność bakterii
Wskaźnikiem stopnia oporności jest wzrost wartości MIC
(np. MIC dla szczepów dwoinki zapalenia płuc: szczep niewrażliwy wymaga ponad 2,5 tys. razy większego
stężenia penicyliny benzylowej od szczepu wrażliwego)
Oporność bakterii
Oporność w testach a oporność in vivo
hemoglobina wiąże tetracykliny i penicylinę
niskie pH w pewnych płynach ustrojowych i moczu zmniejsza aktywność aminoglikozydów, erytromycyny, klindamycyny a zwiększa chlorotetracykliny
patogeny ulegające internalizacji (Salmonella, Mycobacterium, Chlamydia) – siła działania leku zależy od jego zdolności do wnikania do komórek eukariotycznych (β-laktamy i aminoglikozydy wnikają słabo, a makrolidy i azalidy – dobrze)
Oporność bakterii
Oporność może być przekazywana pomiędzy bakteriami
transfer pionowy – na skutek podziałów w obrębie bakterii jednego gatunku
transfer horyzontalny – pomiędzy bakteriami różnych rodzajów
odpowiedzialne są za to plazmidy R (resistance)
na drodze: koniugacji, transdukcji (przez fagi) oraz transformacji (pobieranie DNA z otoczenia)
Oporność bakterii
Geny oporności mogą być zlokalizowane w:
1. chromosomach
2. plazmidach
3. transpozonach
4. integronach
Oporność bakterii
Oporność chromosomowa
powstaje na skutek mutacji spontanicznych albo indukowanych mutagenami (UV, promienie X, azotyny)
istotna dla transferu pionowego
Przykłady:E. coli – na chromosomie wykryto geny: eryC (oporność
na erytromycynę), linB (na linkomycynę)
Gronkowiec złocisty – gen bla (na penicylinę)
Oporność bakterii
Oporność plazmidowa
najbardziej istotna z punktu widzenia medycyny
plazmid niekoniugacyjny może zostać ‘przemycony’ razem z koniugacyjnym lub ulec z nim rekombinacji
pewne plazmidy nie mogą współistnieć w jednej komórce i na tej podstawie zalicza się je do tzw. grup niezgodności (transfer horyzontalny)
wiele kopii jednego plazmidu w jednej komórce może determinować stopień oporności na dany antybiotyk
transpozaza oporność - Tet
transpozaza oporność - Amp
Oporność bakterii
Oporność warunkowana przez transpozony – mobilne fragmenty DNA
zdolności mutagenne (integracja do chromosomu lub plazmidu)
ważne źródło zmienności i nabywania oporności w tym oporności wielolekowej
Oporność bakterii
Integrony– mobilne fragmenty DNA
podobnie jak transpozony są mobilne stanowią naturalne systemy klonowania i ekspresji
kaset genowych występują w chromosomach, plazmidach i
transpozonach super-integrony i integrony oporności wielorakiej –
zawierają kilka kaset
Oporność bakterii
kaseta oporność aktywność (enzym)
blaP1, P2, P3oxa1, oxa2 itd.
β-laktamy β-laktamaza
aadA 1a, 1baadA2aadBaacA1aacA4aacC
aminoglikozydy adenylotransferaza aminoglikozydowa
acetylotransferaza aminoglikozydowa
catB2, B3, B5clmA
chloramfenikol acetylotransferaza chloramfenikolowa
dfrA1, A5, A7....dfrB1, B2, B3
trimetoprim redukataza dihydrofolianowa
sat streptotrycyna acetylotransferaza streptotrycynowa
Kasety genowe występujące najczęściej:
β-laktamaza (penicylinaza) – rozkłada wiązania β-laktamowe penicylinacetylotransferaza aminoglikozydowa (AAC) – modyfikacja grupy aminowejadenylotransferaza aminoglikozydowa (ANT) – modyfikacja grupy hydroksylowejfosfotransferaza aminoglikozydowa (APH) – modyfikacja grupy hydroksylowej
Oporność bakterii
PODSTAWOWE MECHANIZMY OPORNOŚCI:
1. modyfikacja miejsca działania (uchwytu), np. zmiana w białkach rybosomalnych, prekursorach mureiny, gyrazie)
2. inaktywacja enzymatyczna leku, np. β-laktamaza w β-laktamowych, acetylo-, adenylo- i fosfotransferazy w aminoglikozydach, esteraza w erytromycynie
3. hamowanie transportu do komórki, np. zmiany w budowie błony, pogrubienie mureiny
4. wytwarzanie alternatywnego metabolizmu omijającego hamowany przez antybiotyk proces
5. zwiększenie stężenia enzymu hamowanego przez lek, np. reduktaza dihydrofolianowa
6. pompy aktywnie usuwające leki z komórki
7. zmniejszenie aktywności enzymu przeprowadzającego aktywację leku
Oporność bakterii
MECHANIZMY OPORNOŚCI:
Antybiotyki działające na kwasy nukleinowe
Chinolony i fluorochinolony mutacje w genach kodujących topoizomerazę II (gyrazę) i IV – zmniejszenie
powinowactwa kompleksu Topo-DNA do tych leków pompy MDR (oporność wielolekowa) mutacje genu kodującego porynę OmpF – zmniejszenie wnikania
Pochodne kumarynowe (nowobiocyna, kumermycyna) substytucje lub mutacje genu gyrazy pompy - usuwanie
Ansamycyny (rifamycyny, streptowarycyny) mutacje genu podjednostki polimerazy RNA (rpoB) – hamowanie wiązania
leku do polimerazy
Oporność bakterii
Antybiotyki hamujące syntezę białek
Aminoglikozydy i aminocyklitole enzymatyczna inaktywacja lub modyfikacja leku metylacja 16S rRNA (metylazy) mutacja genu 16S rRNA zmiana przepuszczalności osłon bakteryjnych Tetracykliny enzymatyczna inaktywacja antybiotyku – znany tylko 1 gen (rzadki) aktywne usuwanie – pompy protonomotoryczne ochrona rybosomu – przez białko inaktywujące Tet przed jego reakcją z
rybosomemMakrolidy, linkozamidy i streptograminy metylacja 23S rRNA (metylazy) mutacje w białkach budujących jednostkę 50S rybosomu inaktywacja enzymatyczna - esterazy (rozszczepienie), transferazy,
fosoforylazy i hydrolazy (modyfikacja struktury) aktywne usuwanie:
transportery ABC (ATP-binding cassette) – zależne od hydrolizy ATP transportery MFS – napędzane siłą protonomotoryczną
Oporność bakterii
Oporności te mogą być razem przenoszone w jednym plazmidzie: fosofotransferaza, metylaza i pompa ABC
Chloramfenikol oporność enzymatyczna (CAT – acetylotransferaza) mutacje modyfikujące podjednostkę 50S rybosomu pompa zależna od energii
Oporność bakterii
Inhibitory syntezy mureiny
Wankomycyna – synteza zmienionych prekursorów mureiny, które mają mniejsze powinowactwo do wankomycyny
Antybiotyki β-laktamowe β-laktamazy – inaktywują antybiotyk przez hydrolizę pierścienia β-
laktamowego, gen - w chromosomalnym (np. Ampr) lub plazmidowym (np. Ap) DNA; 4 klasy molekularne: A, B, C, D na podstawie sekwencji genów, kryteriów biochemicznych i genetycznych; najpowszechniejszy gen blaTEM-1 kodujący TEM-1; występują w przestrzeni periplazmatycznej (Gram-) i uwalniane lub związane z powierzchnią komórki (Gram+)
modyfikacje poryn błony zewn. – ich brak lub zmniejszenie światła kanału zmianę powinowactwa białek wiążących penicylinę (PBP) do penicyliny,
funkcja białka w syntezie mureiny pozostaje niezmieniona
Oporność bakterii
Antymetabolity – sulfonamidy i trimetoprim
Sulfonamidy
wytwarzanie zmodyfikowanego enzymu (celu działania leku) – syntazy dihydropterynianowej (DHPS); oporny enzym – kodowany przez plazmidowe DNA, a naturalny – wrażliwy – przez chromosomalne
nadprodukcja kwasu p-aminobenzoesowego (PABA) współzawodniczącego o dostęp do centrum aktywnego DHPS
nadprodukcja DHPS
Trimetoprim nadprodukcja reduktazy dihydrofolianowej (DHFR) na skutek mutacji
promotora genu chromosomalnego enzym DHFR o mniejszym powinowactwie do trimetoprimu
Oporność wirusów
Oporność wirusów
wysoka częstość mutacji wirusowego genomu jest związana z ‘omylnością’ wirusowej polimerazy (dla HIV i grypy)
wysoki wskaźnik proliferacji tych wirusów sprawia, że
nawet u nieleczonych osób liczba odmian wirusa jest duża
oporne szczepy ujawniają się w trakcie selekcji
Oporność wirusów
HIVoporność na wszystkie chemioterapeutyki tj. analogi nukleozydów hamujące aktywność odwrotnej transkryptazy inhibitory odwrotnej transkryptazy (nienukleozydowe) inhibitory proteaz
Oporność wiąże się z mutacjami genów: transkryptazy i proteazy
Dla pojedynczo stosowanych leków jak zydowudyna, lamiwudyna oporność rozwija się w przeciągu tygodni lub miesięcy
Obecnie stosuje się kilka substancji jednocześnie – większa efektywność
wirusy Herpes oporność ogranicza się do pacjentów z obniżoną odpornością acyklowir i famcyklowir wymagają obecności kinazy tymidynowej wirusa
do swojej aktywacji (inhibicja polimerazy wirusa) większość opornych mutantów posiada zmienioną lub jest pozbawiona tej
kinazy
lekooporność nowotworów
Lekooporność a chemoterapia nowotworów
Szlaki molekularne powodujące rozwój oporności na leki:
1. hamowanie przedostawania się leków do wnętrza komórki2. zwiększenie usuwania leków z wnętrza komórki3. aktywacja systemów detoksykacyjnych4. zmiany białek, z którymi wiąże się lek5. zaburzenia procesów, związanych ze zmianami struktury DNA6. aktywacja procesów reperacji DNA7. blokowanie apoptozy
lekooporność nowotworów
Aktywne usuwanie leków z komórki
rodzina białek transporterów ABC (ATP-binding cassette) – białka błonowe z domeną wiążącą ATP; energia hydrolizy ATP wykorzystywana do transportu; transportują wiele substancji
posiadają funkcje fizjologiczną – oczyszczanie organizmu z substancji toksycznych (nerki – podczas wytwarzania moczu, także są w jelicie grubym, wątrobie i nadnerczach)
najczęściej występują:mdr1 – koduje glikoproteinę Pmrp2, 3 i 6 – białka powiązane z opornością wielolekową – ich obecność wiąże się z opornością na winblastynę, winkrystynę, antracykliny, aktynomycynę-D i cisplatynę
lekooporność nowotworów
Detoksykacja leków
Dwufazowa:I. hydroksylacja przy udziale cytochromu P450II. przekształcenie hydroksylowanych związków do
polarnych przez sprzęganie z glutationem – koniugaty glutationowe usuwane przez MRP
Istnieje pozytywna korelacja pomiędzy poziomem glutationu a opornością na cisplatynę i doksorubicynę
lekooporność nowotworów
Modyfikacje topoizomerazy IIα
Topoizomeraza IIα tworzy kompleksy rozszczepialne które są stabilizowane np. przez etopozyd i antracykliny
Komórki oporne obniżają poziom ekspresji topoizomerazy IIα
lekooporność nowotworów
Modyfikacje receptorów błonowych
nowotwory piersi i prostaty (zależne od hormonów płciowych) leczone tamoksifenem i flutamidem mogą:
zwiększyć ilość receptorów błonowych zmniejszyć próg aktywacji receptorów na skutek mutacji ulegać aktywacji agonistami-
inhibitorami (TAM i FLU)
1. „Bakterie antybiotyki lekooporność” Z. Markiewicz, Z. Kwiatkowski PWN 2001
2. Molekularne mechanizmy chemooporności w raku nerki J. Szenajch, A. Cieślak (2005) Współczesna Onkologia 9: 123-8